二〇一二年一月
前 言
《中国输血技术操作规程（血站部分》自1997年发布以来，对促进血站规范化管理起到重要的作用。随着输血科学技术的进步和血液管理工作要求的提高，原有内容已经不适应当前需要，为此卫生部组织专家重新编制《血站技术操作规程（2012版）》（以下简称《规程》）。
本《规程》正文包括献血者健康检查、全血采集、血液成分制备、血液检测、血液隔离与放行和质量控制6个部分，对所涉及的关键技术要点做出相应规定。其中一些原则性的规定，血站在制定自身的操作规程时应当根据实际情况进一步细化。以“宜”表述的内容为推荐性内容。
本《规程》的附录为资料性附录，供血站参考。
各血站应当按照国家相关法律、法规、规章、技术规范和标准，以及本《规程》的要求，结合具体工作实际，编制适合本血站使用的技术操作规程。
本《规程》自2012年6月1日起施行。
《中国输血技术操作规程（血站部分）》（1997年）同时废止。
目 录
1 献血者健康检查 1
2 全血采集 2
3 血液成分制备 7
4 血液检测 13
5 血液隔离与放行 22
6 质量控制 24
附录A 献血者血红蛋白检测（硫酸铜目测法） 35
附录B 血液检测方法的确认 38
附录C 血液检测试剂（酶联**/核酸试剂）进货验收与放行记录表 54
附录D 血液检测室内质控方法 55
附录E 微板法ABO血型定型试验 60
附录F 血液质量控制检查方法 62
附录G 血袋标签确认方法 68
1 献血者健康检查
1.1 目的
按照GB18467《献血者健康检查要求》（以下简称《要求》）的规定，对具有献血意向的潜在献血者进行健康检查，对检查结果进行综合分析和判断，做出是否适合献血的结论，保障献血者健康和**。
1.2 核对献血者身份
将献血者本人相貌与其有效身份证件原件核对。有效身份证件包括居民身份证、居民社会保障卡、驾驶证、军（警）官证、士兵证、港澳通行证和台胞证以及外国公民护照等。
1.3 登记献血者身份信息
核查献血者身份无误后，将献血者身份信息录入血液管理信息系统（以下简称BMIS），具体录入方式有：1）用身份证识读器读取身份信息并存入BMIS；2）在《献血登记表》手写登记，随后手工录入BMIS，注意核对信息填写和输入的正确性。
1.4 询问和查询既往献血史
询问献血者和查询BMIS有无既往献血史。如献血者曾献血，献血间隔期应符合要求，不处于被暂时或长久屏蔽状态。
1.5 履行告知义务
请献血者仔细阅读、理解献血前须知内容（见《要求》）。
1.6 健康征询
请献血者仔细阅读、理解并如实回答献血前健康征询问题（见《要求》），体检人员给予必要的指导和沟通。
1.7 知情同意
请献血者签名，表明献血者已正确理解献血前须知内容并如实回答献血前健康征询问题，自主、自由地决定是否献血。
1.8 一般检查
按照《要求》规定，对献血者进行一般检查，常规项目包括体重、血压、脉搏等，必要时测量体温。具体检查方法见卫生部《临床护理实践指南》。记录健康检查结果和结论并签名。
1.9 献血前血液检测
在献血前采集献血者血液标本做血液检测。在采集血液标本前应核对献血者身份。检测项目包括血红蛋白（Hb）和丙氨酸氨基转移酶（ALT）检测。血红蛋白检测可采用目测法，如硫酸铜目测法（见附录A）或试纸条比色法，必要时进一步用仪器检测。ALT采用干化学法/速率法记录检测结果和结论并签名。
1.10 健康检查结论
1.10.1 将献血者健康征询、一般检查以及血液检测的结果与《要求》的规定进行对照分析和评价，做出献血者是否符合献血条件的判断并签名。
1.10.2 将健康检查结果和结论与献血者沟通。对于需要长久屏蔽献血的，做好解释工作；对于暂时不适宜献血的，告知不适宜献血的情形解除后，经体检合格可以献血。
1.10.3 引导适合献血的献血者进入血液采集环节。
2 全血采集
2.1 献血场所配置
献血场所的人员、设施、设备和器具、关键物料的配备按有关规定执行。
2.2 采血人员准备
2.2.1 心理调适
采血人员调整好心理与情绪，进入献血者服务工作状态，情绪稳定，工作热情，说话和气，态度和蔼，耐心细致。
2.2.2 技术准备
熟悉采血技术操作规程，尤其应注意关键控制点和近期变更的操作步骤。
2.2.3 着装与配饰 采血人员着工作制服，不佩带戒指、手镯（链）等饰物。
2.2.4 手卫生 采血人员保持手卫生，具体操作按照《WS/T313 医务人员手卫生规范》的规定执行。
2.3 采血器材准备
2.3.1 采血器材清单 建立采血器材卡片，列出采血位所需的全部器材。采血人员按卡片准备和核查采血器材的种类和数量。采血器材的数量与预计采血量相适宜。一次性使用物品在有效期内且包装完好。采血器材准备工作应有专人复核。
2.3.2 血袋 1）无破损、无渗漏，无污染，抗凝剂和保养液无变色；2）处于有效期内；3）宜采用具有留样袋的血袋。
2.3.3 标本管 1）带有分离胶用于检测病毒核酸的标本管；2）用于酶联**吸附法（以下简称ELISA）、ALT和血型检测的标本管。
2.3.4 **剂 1）一般选用含碘**剂，对碘过敏者可选用其他**剂；2）所用**剂应当符合相应的国家标准要求；3）处于有效期内；4）标明启用日期。
2.3.5 采血仪（秤） 开启并检查采血仪（秤），证实正常运行。
2.3.6 热合机 开启并检查热合机，证实处于正常状态。
2.4 献血者身份核对
2.4.1 在静脉穿刺前，应核对献血者身份。
2.5 献血者沟通与评估
2.5.1 在血液采集过程中应当加强与献血者的沟通，尤其是进行每一项主要操作之前，应当与献血者沟通并取得配合。
2.5.2 询问献血者的既往献血经历、近日休息等情况，评估出现献血**反应的可能性和不适合献血的情况。
2.5.3 观察献血者面部表情和肢体语言，是否处于紧张、害怕甚至恐惧状态。如发现这些不利情况，则不急于采血，做好宽慰工作，待献血者解除思想顾虑，充分放松后开始准备采血。
2.6 静脉及其穿刺路径评估与选择
2.6.1 穿刺部位的选择 应选择无损伤、炎症、皮疹、皮癣、**的皮肤区域为穿刺部位。
2.6.2 穿刺静脉的选择 1）选择上肢肘部清晰可见、粗大、充盈饱满、弹性好、较固定、不易滑动的静脉；2）常选择的静脉主要有肘正中静脉、头静脉、前臂正中静脉、贵要静脉等；3）用食指指腹上下左右触摸，确定其位置、粗细和弹性，评估并确定穿刺位点和路径；4）使用止血带可使静脉充盈，便于触及和穿刺。
2.7 穿刺部位**
2.7.1 用无菌棉拭蘸取适量使用浓度**剂，以穿刺点为中心，自内向外螺旋式旋转涂拭，**面积不小于6 cm×8 cm。作用1～3 min 。宜**2～3遍。
2.7.2 不应触摸已**的皮肤，不应靠近已**的皮肤讲话。
2.8 静脉穿刺
2.8.1 待**剂干后方可进行静脉穿刺。
2.8.2 采取相应措施（如用止流夹夹住血袋导管）防止空气进入血袋。手持针柄，取下护针帽，按照预先选定的穿刺部位进行穿刺。
2.8.3 穿刺路径为自皮肤穿刺点进入，皮下组织前行约0.5～1.0 cm，进入静脉腔，前行约0.5～1.0 cm。
2.8.4 如需**次穿刺，应当在征得献血者同意后，在另一手臂选择穿刺部位和静脉，使用新采血袋的采血针进行穿刺。
2.9 血液采集和混匀
2.9.1 静脉穿刺成功后，如果使用的带留样袋的采血袋，松开留样袋夹子，使*先流出的血液流入留样袋，约15～20 ml，用做血液检测标本。夹闭留样袋夹子，松开阻塞件下端止流夹，使血液流入采血袋。如果使用不带留样袋的采血袋，松开夹子，使血液直接流入采血袋。
2.9.2 固定针头位置，用敷料保护穿刺点。
2.9.3 维持静脉穿刺点与血袋的落差，保持血流通畅。嘱献血者做握拳和松手动作，以促进静脉回流。血流不畅时，及时调整针头位置。当不易观察血流时，应注意观察穿刺部位有无异常及血袋重量是否递增。
2.9.4 血液开始流入采血袋后，即将其与抗凝剂轻匀混合。宜采用连续混**血仪。如果采用手工混合，应当至少每90秒混合1次，充分混匀。
2.9.5 应当对采血时间进行控制。200 ml全血采集时间＞5 min，或400 ml全血采集时间＞10 min，应给予特殊标识，所采集的全血不可用于制备血小板。200ml全血采集时间＞7 min，或400 ml全血采集时间＞13 min，所采集的全血不可用于制备新鲜冰冻血浆。
2.9.6 与献血者进行交流，观察献血者面容、表情，及时发现并处置献血反应。
2.10 采血结束和献血者休息与观察
2.10.1 采血量达到要求时，嘱献血者松拳，松开止血带，合闭止流夹，用创可贴/**棉球/纱布轻按静脉穿刺点，拨出针头后即加重按压，用弹力绷带包扎，松紧度适中。
2.10.2 嘱献血者在献血者休息处用茶点，休息10～15 min。
2.10.3 如出现献血**反应，按相应程序处理。
2.11 献血后注意事项的告知
2.11.1 应当印制献血后注意事项，并将其发给每位献血者。
2.11.2 献血后注意事项主要有：1）穿刺点上的敷料应保留至少4小时；2）多补充水分，食用易消化的食物和水果，避免饮酒，保证充足的睡眠；3）献血后24小时内不剧烈运动、高空作业和过度疲劳；4）工作人员的联系方式，如果存在献血前没有如实告知的可能影响血液**的高危行为，或者献血后感觉明显不适或异常，请其及时联系工作人员。
2.12 致谢
发给献血者无偿献血证和纪念品，表示感谢，鼓励定期献血。
2.13 留取标本
2.13.1 检测结果用于判定血液能否放行的标本只能在献血时同步留取，不得在献血者健康检查时提前留取。
2.13.2 如果使用带留样袋的采血袋，将留样针插入真空采血管，留取血样。
2.13.3 如果使用不带留样袋的采血袋，将静脉穿刺针插入真空采血管，留取血样。应单手操作，避免手被针头刺伤。
2.13.4 将标本管内促凝剂或抗凝剂与血液充分混匀。
2.14 血袋及血液标本标识
2.14.1 一次只能对来源于同一献血者的一份血袋、标本管和献血记录进行标识。经核对后，将惟一性条形码标识牢固粘贴在采血袋、标本管、转移袋、血袋导管、献血记录单上。
2.14.2 宜在标本管与留样针/静脉穿刺针分离前开始标识，对采血袋和标本管的标识应当首先连续完成，不应中断。
2.14.3 宜在标本管与留样针/静脉穿刺针分离前核查采血袋、血液标本、献血登记表，所标识的献血条形码应一致。宜采用计算机程序进行核查。
2.15 热合
2.15.1 分段热合血袋导管，以供交叉配血、血型复查和血液标本保存使用。血袋应保留注满全血的导管至少20 cm。
2.15.2 在热合过程中不应用力牵拉或扭转导管，待焊极松开1～2秒后方可取出已封口的导管。
2.15.3 应检查热合部位，如有渗漏，则重新热合，并评估对血液无菌性的影响。
2.15.4 热合分离针头，将其放置在利器盒内。
2.16 血液保存
2.16.1 全血采集后应尽快在合适的温度下保存。
2.17 血液标本处理和保存
2.17.1 核酸检测标本应及时离心。
2.17.2 血液标本采集后应尽快处理，在合适的温度下保存。
2.18 献血现场整理
2.18.1 献血相关信息应及时录入计算机管理信息系统。
2.18.2 盘点采集血液、标本、献血登记表数量，应当一一对应，保证准确无误。
2.18.3 做好血液装箱、运输和交接工作。
2.18.4 盘点物料消耗。
2.18.5 做好医疗废物装箱、运输和交接工作。
2.18.6 整理清洁现场，用**剂擦拭操作台及采血器材，清洁地面。
3 血液成分制备
3.1 血液成分品种
3.1.1 血液成分品种见GB18469《全血及成分血质量要求》。
3.2 制备环境
3.2.1 制备环境应卫生整洁，定期**。
3.2.2 应尽可能以密闭系统制备血液成分。
3.2.3 用于制备血液成分的开放系统，制备室环境应达到10000级、操作台局部应达到100级（或在超净台中进行）。
3.2.4 制备需要冷藏的血液成分时，应尽可能缩短室温下的制备时间。
3.3 设备
3.3.1 设备数量及功能应能满足制备工作的要求。
3.3.2 应建立和实施设备的确认、维护、校准和持续监控等管理制度，实施惟一性标识及使用状态标识，以确保设备符合预期使用要求。
3.4 物料
3.4.1 物料应能满足制备工作的需要。
3.4.2 物料质量及其生产和供应方的资质应符合相关法规的要求。
3.4.3 物料使用前，应检查有效期、外观质量等，确认符合质量要求后方可使用。对不合格物料应进行标识、隔离，防止误用。
3.4.4 制备方法 制备新的血液品种或制备条件发生明显改变时，应对血液制备方法进行确认。
3.5 起始血液
3.5.1 用于制备血液成分的起始血液应符合GB18469《全血及成分血质量要求》的要求。
3.5.2 起始血液的保存和运输应当符合国家有关规定的要求。
3.5.3 接收起始血液时，应核对数量，检查外观、血袋标签等内容，确认符合质量要求后方可用于血液成分制备。
3.6 制备方法
3.6.1 离心
3.6.1.1 根据所制备血液成分要求和离心机操作手册，确定离心转速、加速和减速、离心时间和温度等参数，编制离心程序。
3.6.1.2 制备血小板、粒细胞的离心温度为22±2℃。
3.6.1.3 制备其他血液成分的离心温度为4±2℃。
3.6.1.4 离心程序应经过确认，应能分离出符合质量要求的血液成分。
3.6.1.5 对已经投入常规使用的离心程序的变更实施控制，定期检查核对，防止被非授权修改。
3.6.1.6 每批血液制备的离心记录应包括离心操作者签名和所采用的离心程序。
3.6.2 分离
3.6.2.1 离心结束后，从离心机中取出离心杯，从离心杯中取出血袋，避免振动，进行目视检查，观察离心效果、血袋及其导管有无渗漏，离心杯中有无血迹，如有破损应查找渗漏点。血袋破漏的，应作**和报废处理。
3.6.2.2 将血袋置于分浆夹或血液分离机。将不同分层的血液成分转移至密闭系统的转移联袋中，以*大限度收集目的成分（红细胞、血小板、血浆等），并且使不需要的其他成分的残留量*小的方式进行分离和转移。
3.6.3 速冻
3.6.3.1 速冻是保存凝血因子Ⅷ的关键加工步骤，冷冻速率和血浆中心温度是2个关键参数。
3.6.3.2 应当使用专用设备，按操作说明书进行冷冻操作。
3.6.3.3 应当将拟速冻的血袋逐袋平放，而不应重叠堆放。
3.6.3.4 应当将新鲜冰冻血浆和冷沉淀凝血因子快速冻结，*好在60 min内将血浆中心温度降至-30℃以下。
3.7 标识
3.7.1 使用联袋制备时，在原袋和转移袋分离之前，应当检查每个血袋上献血条码的一致性。宜采用计算机系统进行核对，以避免人为差错。
3.7.2 需要连接新的血袋（过滤、分装等）时，应当保证每一血袋献血条码一致。宜采用按需打印方式产生标签，粘贴完毕，经计算机系统核对无误后，才给予断离。
3.7.3 应当对血液制备过程中发现的疑似不符合品进行标识和隔离，以进一步调查和判断。
3.8 目视检查
3.8.1 在接收、离心、分离、热合及交付的各个环节应对每袋血液进行目视检查。
3.8.2 目视检查内容主要有：是否有渗漏、标签是否完整、血液外观是否正常。
3.8.3 目视检查发现异常的，应给予标识、隔离及进一步处理。
3.9 质量记录
3.9.1 制备记录主要有：血液交接、制备，设备使用与维护，制备环境控制，医疗废物处理等。
3.9.2 制备记录应可追溯到起始血液、制备人员、制备方法、制备环境、使用设备和物料。
3.9.3 制备记录宜以电子记录为主，以手工纸面记录为补充。
3.10 全血分离制备血液成分
3.10.1 多联袋制备血液成分。
3.10.1.1 红细胞和冰冻血浆的制备 1）第1次重离心后将尽可能多的血浆转移至转移袋；2）将红细胞保存液袋内的红细胞保存液转移至红细胞袋，充分混合即为悬浮红细胞；3）核对血袋上的献血条形码，如一致则热合断离，生成1袋悬浮红细胞和1袋血浆；4）血浆红细胞混入量少（目视观察）即可将血浆袋热合断离；5）如血浆红细胞混入量较多，应当经过第2次重离心后，把上清血浆转移至已移空的红细胞保存液袋，热合断离（如欲制备冷沉淀，则不热合断离）；6）将血浆速冻，低温保存。
3.10.1.2 红细胞、浓缩血小板和冰冻血浆的制备（富血小板血浆法）：1）第1次轻离心后将富含血小板血浆转移至转移袋；2）将红细胞保存液袋内的红细胞保存液转移至红细胞袋；3）核对血袋上的献血条形码，如一致则热合断离，生成1袋悬浮红细胞和1袋富血小板血浆；4）将富含血小板血浆袋重离心，上清为血浆，沉淀物为血小板；5）留取适量血浆，将多余的血浆转移至已经移空的红细胞保存液袋，热合断离，生成1袋浓缩血小板和1袋血浆；6）将血浆袋速冻，低温保存；7）将浓缩血小板袋在室温静置1～2小时，待自然解聚后，轻轻均匀血袋，制成浓缩血小板混悬液，在22±2℃的环境下振荡保存。
3.10.1.3 红细胞、浓缩血小板和冰冻血浆的制备（白膜法）：1）第1次重离心后，将血浆转移至第1个转移袋，将适量血浆及白膜层转移至第2个转移袋；2）将红细胞保存液袋内的红细胞保存液转移至红细胞袋，充分混合即为悬浮红细胞；3）核对血袋上的献血条形码，如一致则热合断离悬浮红细胞袋和血浆袋；4）将白膜成分袋和1个空袋一起进行轻离心，将富含血小板血浆（上层）转移至空袋，制成浓缩血小板，热合断离，弃去白细胞袋。
3.10.2 冷沉淀凝血因子制备
3.10.2.1 用于制备冷沉淀凝血因子的起始血液为新鲜冰冻血浆。
3.10.2.2 离心法
3.10.2.2.1 取出待制备冷沉淀的新鲜冰冻血浆，置4±2℃冰箱中过夜融化或在4±2℃水浴装置中融化。
3.10.2.2.2 当血浆基本融化时，取出血浆，在4±2℃的环境下重离心。
3.10.2.2.3 将大部分上层血浆移至空袋，制成冰冻血浆。将留下的20～30ml血浆与沉淀物混合，制成冷沉淀凝血因子。
3.10.2.3 虹吸法
3.10.2.3.1 将新鲜冰冻血浆袋置于4±2℃水浴装置中，另一空袋悬于水浴箱外，位置低于血浆袋，两袋之间形成一定的高度落差。
3.10.2.3.2 血浆融化后，随时被虹吸至空袋中，当融化至剩下40～50 ml血浆与沉淀物时，闭合导管，阻断虹吸。将血浆与沉淀物混合，制成冷沉淀凝血因子。将冰冻血浆袋和冷沉淀凝血因子袋热合断离。
3.10.3 洗涤红细胞制备
3.10.3.1 待用洗涤溶液联袋提前放置冷藏保存，无破损渗漏，溶液外观正常，在有效期内。
3.10.3.2 将合格的红细胞悬液用作制备洗涤红细胞悬液的起始血液，无破损渗漏，血液外观正常，在有效期内。
3.10.3.3 使用无菌接合机将待洗涤的红细胞悬液袋导管和洗涤溶液联袋进行无菌接合连通。
3.10.3.4 将洗涤溶液移至红细胞袋内，液体量约为100ml/单位，夹紧导管，混匀。
3.10.3.5 按照制备红细胞的离心程序进行离心操作。
3.10.3.6 离心后将血袋取出，避免震荡，垂直放入分浆夹中，把上清液转移至空袋内，夹紧导管。
3.10.3.7 重复3.10.4～3.10.6步骤，洗涤3次。
3.10.3.8 将适量（50 ml/单位）保存液（生理盐水或红细胞保存液）移入已完成洗涤的红细胞，混匀。
3.10.3.9 热合，贴签，入库。
3.10.3.10 如果是在开放环境制备，应严格遵从无菌操作。
3.10.3.11 如果在开放环境制备或*后以生理盐水混悬，洗涤红细胞保存期为24小时。如果是在闭合无菌环境中制备且*后以红细胞保存液混悬，洗涤红细胞保存期与洗涤前的红细胞悬液相同。
3.10.4 去除白细胞
3.10.4.1 应当使用白细胞过滤技术去除全血或红细胞悬液中的白细胞。
3.10.4.2 根据白细胞过滤器生产方说明书的要求进行过滤操作。
3.10.4.3 应当在密闭环境（使用白细胞过滤多联血袋或无菌接合技术）制备。
3.10.4.4 应当在采血后2天内（采血次日为第1天）完成白细胞过滤。
3.10.4.5 检查待滤过血液的外观，并充分混匀后进行过滤。
3.10.4.6 如果在进行白细胞过滤操作前，血液已经处于保存温度（4 ±
2℃），需要在室温进行过滤时，室温应≤26℃，而且应当尽快放回至既定保存温度的环境中，从取出到放回的时间应＜3小时。
3.10.4.7 如果在白细胞过滤后，将血液转移至不属于原联体血袋的其他血袋，应当建立与实施标识控制机制，保证过滤后血液的正确标识。
3.10.5 冰冻红细胞
3.10.5.1 红细胞甘油化
3.10.5.1.1 取拟冰冻保存的全血或悬浮红细胞，离心去除上清液，用无菌接合技术将红细胞转移至容量适当的、适宜于冰冻保存的转移袋内。
3.10.5.1.2 在无菌条件下，缓慢滴加复方甘油溶液至红细胞袋内，边加边振荡，使其充分混匀。
3.10.5.1.3 在室温中静置平衡30 min，置-65℃以下保存。
3.10.5.2 冰冻红细胞的解冻 从低温冷冻保存箱中取出冰冻红细胞，立即放入37℃～40℃恒温水浴箱中，轻轻振动使其快速融化，直至冰冻红细胞完全解冻。
3.10.5.3 洗涤除去甘油 将专用洗涤盐液袋与解冻红细胞袋无菌接合，采取渗透压梯度递减方法洗涤。*后1次的洗涤上清液应无明显溶血迹象。
3.10.5.4 使用自动化设备制备冰冻和解冻红细胞时，按照设备使用说明书进行操作。
3.10.6 血浆病毒灭活 (亚甲蓝光化学法)
3.10.6.1 根据设备操作说明书设置医用血浆病毒灭活光照柜的参数。
3.10.6.2 根据血浆的规格选择相应病毒灭**袋。
3.10.6.3 用无菌导管连接设备或百级净化台内按无菌操作技术将血浆袋与病毒灭**袋连接。
3.10.6.4 将血袋悬挂于支架上，打开导管夹，使血浆经“亚甲蓝添加元件”，流入光照袋。
3.10.6.5 在医用血浆病毒灭活光照柜中进行光照。
3.10.6.6 光照处理后的血浆经病毒灭活装置配套用输血过滤器过滤，滤除亚甲蓝和绝大部分白细胞，即得病毒灭**浆。
3.10.7 血液辐照
3.10.7.1 辐照室应符合《电离辐射防护与辐射源**基本标准》的要求。
3.10.7.2 按照辐照仪使用说明书设置辐照参数。
3.10.7.3 血液辐照*低剂量为25 Gy，血液任何位点的辐照剂量不宜超过50 Gy。
3.10.7.4 红细胞在采集后14天内可辐照，辐照后可再储存14天。
3.10.7.5 血小板在保存期内均可辐照，辐照后可保存至从采集算起的正常保存期限。
3.10.7.6 粒细胞宜在采集后尽快辐照，辐照后宜尽快输注。
3.10.7.7 在辐照过程中应严格区分未辐照和已辐照血液的标识。
3.10.7.8 冰冻解冻去甘油红细胞和血浆不需辐照处理。
4 血液检测
4.1 可经输血传播感染的检测项目及检测方法
4.1.1 人类**缺陷病毒（HIV）感染标志物及其检测方法有2种选择，可任选其中1种：1）采用2个不同生产厂家的ELISA试剂检测HIV-1和HIV-2抗体或联合检测HIV-1和HIV-2抗原和抗体；2）采用1种ELISA试剂检测HIV-1和HIV-2抗体或联合检测HIV-1和HIV-2抗原和抗体，采用1种试剂检测HIV核酸。
4.1.2 乙型肝炎病毒（HBV）感染标志物及其检测方法有2种选择，可任选其中1种：1）采用2个不同生产厂家的ELISA试剂检测乙型肝炎表面抗原（HBsAg）；2）采用1种ELISA试剂检测HBsAg，采用1种试剂检测HBV核酸。
4.1.3 丙型肝炎病毒（HCV）感染标志物及其检测方法有2种选择，可任选其中1种：1）采用2个不同生产厂家的ELISA试剂检测HCV抗体或联合检测HCV抗原和抗体；2）采用1种ELISA试剂检测HCV抗体或联合检测HCV抗原和抗体，采用1种试剂检测HCV核酸。
4.1.4 ALT采用2种方法（干化学法和速率法）进行2次检测，分别在采血前和采血后进行。
4.1.5 梅毒螺旋体感染标志物及其检测方法：采用2个不同生产厂家的ELISA试剂检测梅毒特异性抗体。
4.2 血液检测试剂
4.2.1 试剂选择
4.2.1.1 应建立血液检测试剂的评价、选择和确认程序。
4.2.1.2 血液筛查试验的敏感性和特异性应尽可能高。
4.2.1.3 有条件的实验室可自行开展试剂评价（见附录B）。不具备条件的实验室可充分利用国家专业机构（如中国食品药品检定研究院、中国**预防控制中心、卫生部临床检验中心等）的评价数据。
4.2.2 证照要求
4.2.2.1 应建立血液检测试剂证照审核程序，在采购前和验收时核实应具备的有效证照文件。
4.2.2.2 采购药品类检测试剂应索取以下加盖供货单位印章的资料存档：1）《药品生产许可证》或者《药品经营许可证》和营业执照复印件；2）《药品生产质量管理规范》或者《药品经营质量管理规范》认证证书复印件；3）药品的批准证明文件复印件；3）供货单位药品销售委托书；4）销售人员有效身份证明复印件；5）血源筛查试剂的批签发文件；6）出厂质量检验报告。
4.2.2.3 采购医疗器械类检测试剂应索取以下加盖供货单位印章的资料存档：1）《医疗器械生产企业许可证》或者《医疗器械经营企业许可证》和营业执照复印件，对生产、经营属于《医疗器械分类目录》中**类医疗器械的企业，只需索取营业执照复印件；2）医疗器械注册证书和《医疗器械注册登记表》复印件；3）供货单位医疗器械销售委托书；4）销售人员有效身份证明复印件；5）出厂质量检验报告。
4.2.3 进货检查验收 应建立并执行进货检查验收制度，检查验收内容主要有：1）验明药品合格证明和其他标识；2）外观检查（运输包装箱完整无损，运输冷链符合要求，试剂包装盒完整无损，无液体泄漏）；3）到货数量和销售凭证(购货单位、试剂、供货商等名称，规格、批号、数量、价格）
4.2.4 隔离存放 应将通过进货检查验收后的试剂进行隔离存放，防止误用。
4.2.5 质量抽检
4.2.5.1 应建立并执行试剂的质量抽检制度，应对每次购进的试剂进行质量抽检。
4.2.5.2 应将试剂说明书列入文件控制范围。应对试剂说明书版本和内容进行检查。其操作要求如已变更，实验室的试验操作在试剂启用时应同时变更，严格控制未按试剂说明书进行试验操作的情形发生。
4.2.5.3 试剂盒组成、组分性状与说明书一致，无泄漏，足量，标识正确。
4.2.5.4 用于质量抽检的样本有：1）试剂盒对照；2）室内质控品；3）实验室自制或商品化的血清盘。前2种为必须，后1种为可选。
4.2.5.5 质量抽检结果要求：1）试剂盒对照品检测结果符合试剂说明书要求，2）室内质控品检测结果符合既定要求；3）如果适用，实验室自制或商品化的血清盘符合既定要求。
4.2.6 审核批准
4.2.6.1 应由授权人对采购验收和质量抽检的过程和结果进行审核，批准其用于血液检测。
4.2.6.2 应建立和保存试剂采购验收、质量抽检和审核批准的记录（见附录C）。
4.2.7 试剂保存和质量监控
4.2.7.1 应对经批准使用的试剂进行标识和放行，宜对试剂盒粘贴“可用”标签。
4.2.7.2 应按试剂说明书要求的保存条件进行保存，应在有效期内使用。
4.2.7.3 应对试剂的库存（批号、失效期、库存量等）进行管理，防止试剂过期或者中断。
4.2.7.4 在试剂保存和使用过程中应注意试剂性能出现衰减，如果试剂盒对照品和室内质控品的检测值呈现连续走低趋势且无法使其回升纠正，应考虑终止使用。
4.3 仪器设备使用要求
4.3.1 新的或者经过大修的检测设备在正式投入正常使用之前应经过确认。新设备的确认应包括安装确认、运行确认和性能确认。经过大修的设备根据需要进行适当确认，必要时应进行计量检定或校准。
4.3.2 按照检测设备用户手册要求进行操作，包括使用、校准、维护等工作。
4.3.3 如果使用多台设备检测同一个项目，应对设备之间的性能和差异进行比较。
4.3.4 应定期检查自动化检测设备试验参数的设置，应保存检查记录。
4.3.5 在试验过程中自动化检测设备出现故障需要进行手工操作时，应注意自动化设备操作和手工操作的衔接及其对结果的影响。应记录手工操作步骤和操作者。
4.4 实验室信息管理系统
4.4.1 应使用实验室信息管理系统对整个检测过程（从标本接收、试验、结果和结论判定）进行信息化管理。
4.4.2 实验室信息管理系统的功能应包括：1）标本接收；2）试验项目选择；3）试验数据记录与汇总；4）试验数据的计算；5）试验结果的判定；6）血液筛查结论的判定；7）血液筛查结论传输至血液管理信息系统并为其所利用。
4.4.3 实验室信息管理系统运行参数的设置应建立权限控制。应保存设置参数的书面记录，并定期将其与实际设置参数对照，确保设置无误，应保存核实记录。
4.5 血液检测标本
4.5.1 血液标本的一般要求 1）标本与血液、献血者一一对应；2）标本质量符合检测项目技术要求；3）标本信息具有可追溯性。
4.5.2 血液标本采集与送检程序的制定
4.5.2.1 本血站实验室应与血液标本采集和送检部门进行充分沟通与协商，共同制定标本采集和送检程序，质量管理部门应予以审核。
4.5.2.2 血液集中化检测的委托方和受托方应进行充分沟通与协商，共同制定标本采集和送检程序，双方质量管理部门应予以审核，并经双方法定代表人批准。
4.5.2.3 标本采集和送检程序的要点有： 1）标本类型及检测项目、标本量、标本管、标本运输及包装要求；2）标本的惟一性标识（条形码）；3）标本的质量要求；4）标本采集、送检和接收；5）标本信息和检测报告信息的传输与接收，检测报告时限；6）如为集中化检测，检测的委托方和受托方的标识与联系方式。
4.5.3 血液标本管的选择
4.5.3.1 应根据每项试验的技术要求，采用相应类型的真空采血管留取检测标本。试管应无裂痕、无渗漏，容量应满足检测项目要求。
4.5.3.2 将病毒核酸检测结果列入血液放行依据的实验室，应按照试剂说明书要求选择合适的标本管，*好采用含惰性分离胶的EDTAK2真空采血管留取核酸检测标本。
4.5.4 血液标本的采集与标识
4.5.4.1 应对血液标本采集前的准备、标本的采集、标识、登记和保存过程实施有效控制，一次只对一袋血液和同源血液标本管贴签，确保标本与血液、献血者一一对应，贴签无误。标本质量符合检测项目技术要求。
4.5.4.2 检测结果用于血液放行的血液标本，应在采集血袋血液的同时或者从血袋血液中留取。
4.5.4.3 血液标本的采集与标识的具体操作见本规程第2章全血采集。
4.5.5 血液标本采集后的处理
4.5.5.1 可以电子或纸面方式登记标本信息，应进行核对，防止信息录入错误。可通过网络、传真或其它形式传输标本信息。
4.5.5.2 核酸检测标本采集后，根据所采用的采血管和试验的技术要求实施离心。
4.5.5.3 血液标本在采血现场的临时保存温度为2～10℃。
4.5.6 血液标本包装与运输
4.5.6.1 标本应隔离密封包装，包装材料应满足防水、防破损、防外泄、保持温度、易于**处理。装箱时应保持标本管口向上。
4.5.6.2 对于送交集中化检测实验室的标本的包装要求主要有：1）可使标本运输在过程中保持在2～10℃；2）外包装有明确标识（放置朝向、易碎）和交付接收双方的联系方式。
4.5.6.3 标本应在2～10℃条件下运输，应对运输过程的冷链效果进行确认并定期监测。
4.5.6.4 应对标本运输过程进行记录，其要点有：1）启运时间、地点；2）运抵时间、地点；3）标本箱编号、标本类型、数量；4）运输包装有无受损、有无泄漏；5）运输时间2小时以上的应记录箱内温度；6）标本交运人、承运人；7）运输过程中发生的可能影响标本质量的意外事件及处理措施。
4.5.7 血液标本的交接
4.5.7.1 接收时标本应核查：1）标本来源、数量、采集时间；2）标本采集管使用正确与否；3）标本是否满足既定的质量要求；4）标本与送检单信息对应性和完整性。
4.5.7.2 如发现溢漏应立即将尚存留的标本移出，对溢出标本管和原包装箱进行**并记录，必要时报告实验室负责人和送检单位。
4.5.7.3 应拒收标本的情形有：1）检测申请关键信息缺失或不符；2）标本管上无标识或标识不清、不正确；3）标本管选用错误；4）标本量不足或被稀释；5）不符合试剂说明书要求的情形。
4.5.7.4 标本交接双方应在标本交接记录签名。
4.6 试验操作
4.6.1 按照试剂生产方提供的试剂使用说明书进行操作。
4.6.2 如需对个别试验参数进行修改，应进行确认。
4.6.3 宜采用自动化检测设备操作标本和试剂加样以及试验过程。
4.6.4 自动化设备运行参数的设置应建立权限控制。应保存设置参数的书面记录，并定期将其与实际设置参数对照，确保设置无误，应保存核实记录。
4.6.5 应保存自动化检测设备运行记录，并定期对运行状态进行审核。
4.6.6 自动化检测设备运行时，如果需要人工辅助或干预，应对实施人工辅助或干预的人员、人工辅助或干预的时间和内容、与自动化检测设备运行的衔接等进行记录。
4.6.7 如果是采用手工操作标本和试剂加样或试验微孔板，应完整记录每一加样和操作步骤。
4.7 试验性能监控
4.7.1 一般要求
4.7.1.1 在血液筛查过程中，应对试验性能持续进行监测，以发现正在发生的任何性能变化，这些变化如果没有得到及时纠正，*终可能导致试验批次的失败，或者弱阳性样本的漏检。
4.7.1.2 选择能够及时反映试验性能或试验应用（试验或者试验操作者/操作系统）变化的1项或者多项参数进行监测，以保证试验性能。这些参数包括：1）试验对照的检测值；2）质控品的检测值；3）初、复试有反应率及两者的比例（复试有反应性标本数/初次试验有反应性标本数）。
4.7.1.3 应当根据质控品的特性和用途加以选择和使用。
4.7.1.4 作为试验有效性的外部对照应具备：1）经过国际（国家）标准溯源；2）以合适的基质进行稀释；3）检测标志物含量接近检测限（S/CO值为2～5）。
4.7.1.5 用于监测试验稳定性的质控品，不要求经过国际（国家）标准溯源。
4.7.1.6 实验室应当尽可能使用质控品。
4.7.1.7 质控品所含目标检测物的浓度应满足实验要求。在日常使用前应对质控品的种类、规格、外观、批号和效期进行检查。
4.7.1.8 质控品应与血液检测标本在相同的检测条件下进行检测。如单一微板为一批试验，每一微板至少包括1份外部质控品。
4.7.1.9 外部质控品和内部（试剂盒）对照不可相互替代。
4.7.1.10 外部质控品的用途（用于判定试验有效性或监控试验稳定性）一经确定，不应随意更改。
4.7.2 ELISA室内质控（参见附录D）。
4.8 试验结果的判定
4.8.1 试验结果判定规则 应制定明确的试验有效性和标本试验结果判定规则，将其编写或设置成为计算机程序，对其编写、设置、修改和启用应进行控制，所有修改均应保存原版本，确保其具有可追溯性。
4.8.2 试验有效的判定
4.8.2.1 应核查每批试验所使用的试剂、设备、试验过程、有无人工干预或其他非正常工作步骤出现等关键控制点，正确无误后方可对试验有效性进行判定
4.8.2.2 试剂盒各种试验对照的检测值符合试剂说明书的要求，是判定试验有效的*低要求。
4.8.2.3 如果外部质控品的检测值是作为试验有效性的判定依据之一，其检测值应符合既定要求。
4.8.2.4 如果外部质控品的检测值是作为试验稳定性的监控，其检测值应符合既定范围。如果超出既定范围，按既定程序决定试验是否有效。
4.8.2.5 如果采用人工判定，应详细记录每一判定依据，应双人核查。
4.8.2.6 如果判定一批试验无效，则该批试验所有标本的检测结果均为无效。
4.8.3 标本试验结果计算和判定 判定试验有效后，按照试剂说明书的要求计算临界值和灰区。根据标本检测值与临界值的比较结果，判定为标本检测结论为无反应性、有反应性或不确定。
4.9 ELISA初次试验有反应性标本的重复试验
初次试验为有反应性的检测标本的后续处理有2种选择。
方案1：
以同一试验对原血样（或从血袋导管重新取样）做双孔复试，如果双孔复试结果均为无反应性， 其初试有反应性可能由于假反应性或技术误差导致，检测结论为无反应性，血液可放行供临床使用；如果双孔复试结果中任何1孔为有反应性， 则检测结论为有反应性，对应的血液及由其制备的所有成分应隔离并报废，将血液标本转送相关实验室做进一步确证或补充试验(图4-1)。
方案2：
不做重复试验，初次试验结论即为检测*终结论(图4-1)。
图4-1 初次试验有反应性的处理方案
4.10 核酸初次试验有反应性的进一步处理（见试剂说明书）
4.11 血型检测
4.11.1 血型检测项目 GB18469《全血及成分血质量要求》规定的强制检测项目有：1) ABO血型正确定型；2）RhD血型正确定型。
4.11.2 血型检测方法 血型筛查常用方法有平板法和微板法、血型鉴定常用试管法和微板法。按照试剂说明书和《国内临床检验操作规程》（第3版）的规定进行具体操作和质量控制。附录E提供了建立微板法一般方法，可供实验室自行建立微板法时参考。全自动化血型鉴定系统按照使用说明书进行操作，投入使用前应经过充分确认。如有必要，可增加血型基因检测。
4.11.3 血型检测结论
4.11.3.1 应当经过2次检测结果的比对，一致时才能做出血型检测*终结论。
4.11.3.2 如果2次检测结果不一致，应当进行细致审慎调查，发现导致不一致的原因，正确无误加以解决。
4.12 血液检测*终结论的判定
4.12.1 血液检测合格判定标准 HIV、HBV、HCV、梅毒感染标志物检测的*终结论均为无反应性，ABO/RhD血型正确定型，ALT测定值符合国家相关标准。
4.12.2 血液检测不合格的判定标准 不符合4.12.1条规定的情形。
4.12.3 应当建立和实施血液检测*终结论的计算机判定程序。如果需要人工判定，应由双人复核。
4.13 血液检测结论的报告和利用
4.13.1 血液检测*终结论是血液放行与否的依据。只有检测合格的血液方可放行供临床使用，检测不合格的血液不得放行。
4.13.2 血液检测*终结论应以电子数据传输，并为计算机血液放行控制程序直接利用。
4.13.3 如果需要人工录入血液检测*终结论，或者需要人工放行，应由双人复核。
4.13.4 血液集中检测的双方应明确血液检测结论的报告和利用的方式、职责与分工。
4.13.5 发现血液检测结论报告有误，应迅速启动血液检测报告和血液收回程序。
5 血液隔离与放行
5.1 血液隔离
5.1.1 待检测、制备等尚未被判定合格的血液和不合格的血液应被物理隔离，防止不合格血液的误发放。
5.1.2 应设立有明显标识的合格品区、隔离区和不合格品区。
5.1.3 设施设备应卫生、整洁，并定期清洁。
5.1.4 对血液隔离的贮存设备进行温度监控。
5.1.5 进出血液隔离区域的血液应做好交接和记录，记录至少包括血型、品名、数量、时间、交接人及签名等。
5.2 血液放行
5.2.1 经过培训考核的被授权人员才能承担放行工作，质量管理人员对血液的放行进行监控，并留有监控记录。
5.2.2 确认合格血液
5.2.2.1 对检测不合格、外观不合格、异常采集和符合保密性弃血等的血液，应进行标识，并移入不合格品区。
5.2.2.2 将检测报告中尚未*终判定结果的血液继续隔离并做好标识。
5.2.2.3 确认检测合格及血液外观检查合格的血液。
5.2.3 贴签
5.2.3.1 制定程序，确保对合格血液正确贴签。
5.2.3.2 一次只对一袋血液贴签。
5.2.3.3 合格血液或合格血液制备的每一种血液成分只能印制惟一的合格血液标签。该合格血液标签印有惟一的条形码。
5.2.3.4 需要复制惟一的合格血液标签，应由被授权者确认原先印制的合格血液标签已被销毁。
5.2.3.5 通过惟一的条形码可以追溯到献血者、用血医院以及血液采集、检测、保存、发放等全过程记录。
5.2.3.6 合格血液标签的内容符合《血站质量管理规范》的要求。
5.2.3.7 粘贴标签前应检查确认血袋无破损、无渗漏，血液外观无异常。
5.2.3.8 标签粘合胶应对血液质量无影响。
5.2.3.9 粘贴合格血液标签后应能清楚观察血液外观，并且不会影响血袋透气性。
5.2.3.10 合格血液标签粘贴于血袋后应再次确认该标签粘贴无误。
5.2.3.11 粘贴了合格血液标签的血液才能移入合格库。
5.2.3.12 已经放行进入合格品库的血液，再经制备、分装、转换后，应重新粘贴具有惟一性条形码的合格血液标签，并保证粘贴无误和可追溯性。
5.3 计算机控制
5.3.1 应采用计算机管理信息系统控制血液隔离与放行。
5.3.2 需要人工放行时，应建立与实施复核制度。
6 质量控制
6.1 导则
6.1.1 范围
质量控制包括全血及血液成分质量检查、关键物料质量检查、关键设备质量检查和环境卫生质量检查。
6.1.2 抽样数量 全血及血液成分和关键物料质量检查的抽样量为每月制备量的1%或至少4袋。若该成分血每月制备量少于4袋的，在保证质量的前提之下，由血站自行制订抽样频率和数量。
6.1.3 取样方法 应当尽可能采用密闭系统进行取样。如果采用开放系统取样，应当严格无菌操作。取样对血液质量没有构成影响的，取样后的血液可发放使用。
6.1.4 控制指标 全血及血液成分的质量控制指标遵从GB18469《全血及成分血质量要求》的规定，关键物料、关键设备和环境卫生的质量控制指标遵从有关规定。
6.1.5 检测机构 血站可自行检测，也可委托具备相应检测能力的检测机构（计量检定机构、血站、医院、**预防控中心等）进行检测。
6.1.6 趋势分析 应当对血液质量控制抽检结果进行趋势分析，出现异常趋势时，应当组织有关部门实施调查和回顾，并采取相应的改进措施。进行趋势分析时，应当充分考虑到献血者个体差异，对于由于献血者个体差异所引起的，而且在血液采集和制备过程中难以控制的不影响血液**性的指标（见表6-1），如果有75%的抽检结果落在质量控制指标范围内，可认为血液采集和制备过程受控。
6.2 血液质量控制
6.2.1 检查项目 不同血液品种的质量控制检查项目见表6-1。
表6-1 血液质量控制检查项目
| 血液品种 | 外观 | 标签 | 容量* | 无菌试验 | Hb* | 游离Hb* | 血细胞比容* | 保存期末溶血率* | 白细胞残留量* | 红细胞计数* | 血小板计数* | 血浆蛋白含量* | 上清液蛋白含量* | pH* | Ⅷ因子活性* | 纤维蛋白原含量* | 甘油残留量* | 中性粒细胞计数* | 亚甲蓝残留量* |
| 全血 | √ | √ | √ | √ | √ | | | √ | | | | | | | | | | | |
| 去白细胞全血 | √ | √ | √ | √ | √ | | | √ | √ | | | | | | | | | | |
| 浓缩红细胞 | √ | √ | √ | √ | √ | | | √ | | | | | | | | | | | |
| 去白细胞浓缩红细胞 | √ | √ | √ | √ | √ | | | √ | √ | | | | | | | | | | |
| 悬浮红细胞 | √ | √ | √ | √ | √ | | √ | √ | | | | | | | | | | | |
| 去白细胞悬浮红细胞 | √ | √ | √ | √ | √ | | √ | √ | √ | | | | | | | | | | |
| 洗涤红细胞
(保存期同悬浮红细胞) | √ | √ | √ | √ | √ | | | √ | | | | | √ | | | | | | |
| 洗涤红细胞
(保存期为24 h) | √ | √ | √ | | √ | | | | | | | | √ | | | | | | |
| 冰冻解冻去甘油红细胞 | √ | √ | √ | √ | √ | √ | | | √ | | | | | | | | √ | | |
| 浓缩血小板 | √ | √ | √ | √ | | | | | | √ | √ | | | √ | | | | | |
| 单采血小板 | √ | √ | √ | √ | | | | | √ | √ | √ | | | √ | | | | | |
| 去白细胞单采血小板 | √ | √ | √ | √ | | | | | √ | √ | √ | | | √ | | | | | |
| 新鲜冰冻血浆 | √ | √ | √ | √ | | | | | | | | √ | | | √ | | | | |
| 病毒灭活新鲜冰冻血浆（亚甲蓝光化学法） | √ | √ | √ | √ | | | | | | | | √ | | | √ | | | | √ |
| 冰冻血浆 | √ | √ | √ | √ | | | | | | | | √ | | | | | | | |
| 病毒灭活冰冻血浆
（亚甲蓝光化学法） | √ | √ | √ | √ | | | | | | | | √ | | | | | | | √ |
| 单采新鲜冰冻血浆 | √ | √ | √ | √ | | | | | | | | √ | | | √ | | | | |
| 冷沉淀凝血因子 | √ | √ | √ | √ | | | | | | | | | | | √ | √ | | | |
| 单采粒细胞 | √ | √ | √ | √ | | | | | | √ | | | | | | | | √ | |
| |
注1：“√”为适用检查项目；注2：“ *”为适用于“75%的抽检结果落在质量控制指标范围内，可认为血液采集和制备过程受控”的检查项目
6.2.2 检查方法 质量控制项目的具体试验方法见附录F。
6.3 关键物料质量检查
6.3.1 一次性使用塑料采血袋质量检查
6.3.1.1 抽样：每批至少随机抽检5袋（套）。
6.3.1.2 质量标准
6.3.1.2.1 产品标识：塑料采血袋标记产品名称、型式代号、采血袋（无采血袋时按转移袋）公称容量和国家标准编号组成。塑料采血袋分为单袋（S），双联袋（D），三联袋（T），四联袋（Q）和转移袋（Tr）五种型式。如符合国家标准要求，采血袋公称容量为400mL的双联袋（D）的产品标记为：血袋D-400
6.3.1.2.2 系统密闭性：塑料采血袋的采血针、采血管、输血插口必须连成一个完整的密闭系统，保证采集、分离、输注和储存血液时其内腔不与外界空气相接触。
6.3.1.2.3 血袋袋体外观：塑料采血袋袋体应无色或微黄色，无明显杂质、斑点、气泡。塑料采血袋内外表面应平整，在**过程中和在温度不超过40℃的贮存期内不应有粘连。塑料采血袋热合线应透明、均匀。采血管和转移管内外表面光洁，不应有明显条纹、扭结和扁瘪。袋中的抗凝保存液及添加液应无色或微黄色、无浑浊、无杂质、无沉淀。
6.3.1.2.4 标签应字迹清楚，项目齐全。标签应有下列内容：
1）血液保存液的名称、配方和容量；
2）公称容量（采血量）；
3）无菌有效期及不需通气的说明；
4）“无菌”、“无热原”限定条件的说明，“一次性使用”、“用后销毁”字样，使用说明，保存的血液条件；
5）注意事项：发现渗漏、长霉、混浊等变质现象，禁止使用；
6）产品名称和标记；
7）生产厂家名称、地址和商标；
8）产品批号。
6.3.1.3 检查方法：在光线明亮处，以目力检查；以挤压方式检查系统密闭性。
6.3.1.4 物料检验报告
所选用的血袋必须符合国家相关标准，每一批血袋必须有出厂检验报告。
6.3.1.5 规格：必须符合使用要求。
6.3.1.6 有效期：被检物料必须在有效期内。
6.3.2 一次性无菌注射器质量检查
6.3.2.1 抽样：每批至少随机抽检5支。
6.3.2.2 质量标准
6.3.2.2.1 每个注射器的单包装上应有下列标志：
1）生产厂家名称或商标；
2）产品名称及规格；
3）生产批号及有效期；
4）一次性使用；
5）包装如有破损禁止使用；
6）若带注射针头，应注明规格；
7）“无菌”、“无热原”字样。
6.3.2.2.2 外观：注射器应清洁、无微粒和异物。注射器外套必须有足够的透明度，能毫无困难地读出剂量，能清晰地看到基准线。
6.3.2.2.3 润滑：注射器应有良好的润滑性能。注射器的内表面（包括橡胶活塞），不得有明显可见的润滑剂汇聚。
6.3.2.3 检查方法：在光线明亮处，以目力检查。
6.3.2.4 物料检验报告
所选用的注射器必须符合国家相关标准，每一批注射器必须有出厂检验报告。
6.3.2.5 规格：必须符合使用要求。
6.3.2.6 有效期：被检物料必须在有效期内。
6.3.3 一次性使用去白细胞滤器质量检查
6.3.3.1 抽样：每批至少随机抽检5套。
6.3.3.2 质量标准
6.3.3.2.1 外观：去白细胞滤器外壳应光洁，无明显机械杂质、异物，焊接面应均匀、无气泡，软管应柔软、透明、光洁，无明显机械杂质、异物、扭结。
6.3.3.2.2 每个单包装上应有以下内容：
1）产品名称、规格；
2）使用符号或文字标明去白细胞滤器无菌、无热原；
3）批号及失效日期；
4）标明适用范围的产品标记；
5）制造商和/或经销商名称、地址；
6）单包装内不应有肉眼可见异物。
6.3.3.3检查方法：在光线明亮处，以目力检查。
6.3.3.4 物料检验报告
所选用的去白细胞滤器必须符合国家相关标准，每一批去白细胞滤器必须有出厂检验报告。
6.3.3.5 规格：必须符合使用要求。
6.3.3.6 有效期：被检物料必须在有效期内。
6.3.4 一次性使用病毒灭活输血过滤器质量检查
6.3.4.1 抽样：每批至少随机抽检5套。
6.3.4.2质量标准
6.3.4.2.1 外观：病毒灭活输血过滤器的软管应光洁，无明显机械杂质、异物、扭结。过滤部件、亚甲蓝添加元件外壳应光洁，无明显机械杂质、异物，焊接面应均匀、无气泡。
6.3.4.2.2 每个单包装上应有以下内容：
1）产品名称、规格；
2）使用符号或文字标明病毒灭活输血过滤器无菌、无热原；
3）批号及失效日期；
4）标明适用范围的产品标记；
5）制造商和/或经销商名称、地址；
6）单包装内不应有肉眼可见异物。
6.3.4.3 检查方法：在光线明亮处，以目力检查。
6.3.4.4 物料检验报告
所选用的病毒灭活输血过滤器必须符合国家相关标准，每一批病毒灭活输血过滤器必须有出厂检验报告。
6.3.4.5 规格：必须符合使用要求。
6.3.4.6 有效期：被检物料必须在有效期内。
6.3.5 一次性单采耗材质量检查
6.3.5.1 抽样：每批至少随机抽检5套。
6.3.5.2 质量标准
6.3.5.2.1 外观：包装完整，标识清晰。
6.3.5.2.2 每个单包装上应有以下内容：
1）产品名称、规格；
2）使用符号或文字标明无菌、无热原；
3）批号及失效日期；
4）标明适用范围的产品标记；
5）制造商和/或经销商名称、地址。
6.3.5.3检查方法：在光线明亮处，以目力检查。
6.3.5.4 物料检验报告
所选用的单采耗材必须符合国家相关标准，每一批单采耗材必须有出厂检验报告。
6.3.5.5 规格：必须符合使用要求
6.3.5.6 有效期：被检物料必须在有效期内。
6.3.6 血袋标签质量检查
6.3.6.1 抽样：每批至少随机抽检5张。
6.3.6.2 质量标准 标签的底色应为白色，标签应洁净、无破损，字迹清楚；标签上文字一般为实体黑色字体。
6.3.6.3 检查方法：在光线明亮处，以目力检查。
6.3.6.4 物料检验报告
所选用的血袋标签必须符合国家相关标准，每一批血袋标签必须有出厂检验报告。
6.3.6.5 规格：必须符合使用要求。
6.3.6.6 拟采用新的供应方所提供的标签的确认方法参见附录G。
6.3.7 硫酸铜溶液质量检查
6.3.7.1 抽样
6.3.7.1.1 自配硫酸铜溶液：每周检测一次。
6.3.7.1.2 外购成品硫酸铜溶液：每批至少随机抽检5套。
6.3.7.2 质量标准
6.3.7.2.1 自配硫酸铜溶液
用于男性献血者血比重检查的硫酸铜溶液比重，在20℃时应为1.0520，允许误差为±0.0005。用于女性献血者血比重检查的硫酸铜溶液比重，在20℃时应为1.0510，允许误差为±0.0005。
6.3.7.2.2 外购成品硫酸铜溶液
用于男性献血者血比重检查的硫酸铜溶液比重，在溶液允许的使用温度范围时应为1.0520，允许误差为±0.0005。用于女性献血者血比重检查的硫酸铜溶液比重，在溶液允许的使用温度范围时应为1.0510，允许误差为±0.0005。
6.3.7.3 检测方法：见《中华人民共和国药典》（2010年版）二部 附录 “韦氏比重秤法”。
6.3.7.4 物料检验报告
所选用的硫酸铜溶液必须符合国家相关标准，每一批外购硫酸铜溶液必须有出厂检验报告。
6.3.7.5 规格：必须符合使用要求。
6.3.7.6 有效期：被检物料必须在有效期内。
6.3.8 真空采血管质量检查
6.3.8.1 抽样：每批至少随机抽检5支。
6.3.8.2 质量标准
试管上的标志、标签应清晰。试管应无色透明、光滑、平整，正常视力能清楚观察到试管内血样；不得有明显变形、沙眼、气泡、杂质等。
6.3.8.3 检查方法：在光线明亮处，以目力检查。
6.3.8.4 物料检验报告
所选用的真空采血管必须符合国家相关标准，每一批真空采血管必须有出厂检验报告。
6.3.8.5 规格：必须符合使用要求。
6.3.8.6 有效期：被检物料必须在有效期内。
6.3.9 检验试剂质量检查
6.3.9.1 检验试剂包括：乙型肝炎病毒表面抗原诊断试剂盒、丙型肝炎病毒抗体诊断试剂盒、艾滋病病毒抗体诊断试剂盒、梅毒抗体诊断试剂盒、丙氨酸氨基转移酶试剂盒、血型试剂盒、快速筛查试剂盒等。
6.3.9.2 检验报告
对于国家进行批批检的试剂盒，必须有国家批批检报告。国家不进行批批检的试剂，以生产厂商出具的出厂检验报告为准。
6.3.9.3 外观检查：每批抽检5盒试剂盒。试剂盒包装应完整，标识清晰，试剂齐全无渗漏。
6.3.9.4 运输要求
试剂运送途中的温度必须符合试剂说明书要求，供应商必须提供试剂运输冷链监控温度记录。
6.3.9.5 有效期：被检试剂必须在有效期内。
6.4 关键设备质量检查
6.4.1 强制检定设备和校准设备
必须定期对关键设备进行检定或校准，除国家强制检定设备外，其余设备血站可以依据国家计量检定规程，由经培训具有资质的质控人员自行进行，或委托相关计量机构/生产厂商进行。
6.4.2 血站自行监测设备
6.4.2.1 成分制备大容量离心机质量检查
6.4.2.1.1 检查频率：每年监测1～2次，由血站自行或委托离心机厂商进行。
6.4.2.1.2 离心温度
质量标准：规定温度±1℃。
检测方法：于离心机工作间隙，把经计量部门标定的温差电偶温度计的探头放入离心腔内，盖好离心机盖。10分钟后观察离心机温度表显示的温度与温差电偶温度计显示温度的差值。
6.4.2.1.3 离心时间
质量标准：规定时间±20s。
检测方法：使用秒表对离心机的时间控制进行检查。把时间控制表调至规定时间，同时启动秒表，观察离心机时间控制表从开始计时到计时停止秒表所用的时间。即为时间控制表按规定时间计时所用的实际时间。
6.4.2.1.4 离心转速
质量标准：规定转速±50r/min。
检测方法：打开离心机前面板，在连接离心转头轴上贴一张反光标签。把转速控制调到规定转速值，然后启动离心机待转速稳定后，用转速仪的光束照明反光标签，观察转速仪显示屏上的转速值。或采用其它适宜的方法检测。
注意事项：为保证检查人员的**，检测时距转速仪的测量距离不得小于20cm。
6.4.2.2 储血设备质量检查
6.4.2.2.1 检查频率：每月至少一次。
6.4.2.2.2 温度
质量标准： 储血设备的温度应在规定范围内，各储血设备的储存温度见下表。
储血设备温度标准
| 设备种类 | 温度（℃） |
| 储血冷藏箱（库） | 2～6 |
| 血小板温箱（室） | 20～24 |
| 低温冰箱（库） | -25以下 |
| 速冻冰箱 | -50以下 |
| 超低温冰箱 | -65以下 |
检测方法：使用经计量部门标定的温差电偶温度计（**度为0.1℃）测定储血设备箱内的温度。具体布点方式见YY/T0168－2007《血液冷藏箱》。
6.4.2.2.3 电源故障报警系统
质量标准：电源发生故障时，报警系统应立即以声/光方式发出警报。
检测方法：切断储血设备的电源或开启报警测试按钮，模拟电源发生故障，此时报警系统以声/光方式发出警报。或使用其它适宜的方法检测。
6.4.2.2.4 温度失控报警系统
质量标准：当储血设备的温度超出质量标准范围时，报警系统应以声/光方式发出报警。
检测方法：将储血设备的报警范围分别调至低于和高于储血设备温度时，报警系统应以声/光方式发出报警。
6.4.2.3 压力蒸气**器质量检查
6.4.2.3.1 检查频率：每周检查一次。
6.4.2.3.2 检测方法和质量标准：可采用化学指示剂法或生物指示剂法进行**效果监测，具体检测方法和质量标准见《**技术规范》 “压力蒸气**效果的监测方法”。
6.4.2.4 采血秤质量检查
6.4.2.4.1 检查频率
根据采血秤的使用频率制定相应检测频率，每半年至少一次。
6.4.2.4.2 混匀器摇动频率
质量标准：30～32次/分（进口采血秤见生产厂商说明书）。
检查方法：开启采血秤混匀器后，使用秒表计时，观察1分钟内混匀器摇动次数，摇动一个循环为一次。
6.4.2.4.3 称量准确度
质量标准：标示量±2%。
检查方法：开启采血秤，将标准砝码（模拟常规血液采集的重量）置于采血秤上，观察采血秤显示的数值。
6.4.2.4.4 报警功能
质量标准：采血袋中采血量到规定量时指示灯应闪光或蜂鸣器应发音报警。
检查方法：将标准砝码或经标准砝码标定的标准量模拟血袋置采血秤上时，采血秤的声或光提示报警应启动。
附录A
献血者血红蛋白检测（硫酸铜目测法）
A.1 试验原理
全血滴入标准硫酸铜溶液中，形成一层铜蛋白膜，包围在血滴外层。观察全血在已知相对密度（比重）硫酸铜溶液中沉浮情况，可判定其相对密度（比重），从而确定其血红蛋白浓度。
A.2 试剂
A.2.1 用于男性献血者（Hb≥120g/L）检测的硫酸铜溶液比重为1.0520。
A.2.2 用于女性献血者（Hb≥115g/L）检测的硫酸铜溶液比重为1.0510。
A.2.3 不同用途试剂瓶标识应便于区分
A.2.4 采用商品化硫酸铜试剂的，按试剂说明书规定的条件储存，在有效期内使用。
A.2.5 硫酸铜溶液也可自行配制，配制方法见A.5，应保存配制记录。
A.2.6 硫酸铜溶液比重随温度变化而变化的，温度每上升2℃，比重下降0.0005。在配制和使用时应注意这一特性。
A.2.7 每瓶（50 ml）硫酸铜溶液的可用于检测25人次。
A.3 标本要求
A.3.1 新鲜采集的末梢血或静脉血，抗凝或不抗凝血液均可使用。
A.3.2 陈旧、溶血和严重乳糜的血液不可用来试验。
A.4 操作步骤和结果判断
A.4.1 常规采集手指末梢血或静脉血。
A.4.2 在距硫酸铜液面上方1cm处垂直将1滴血液轻轻滴入，血滴应不含气泡。
A.4.3 在15秒内肉眼观察，判断结果：1）血滴很快下沉于瓶底，表明血液比重大于硫酸铜溶液比重，血红蛋白含量符合献血标准；2）血滴在硫酸铜溶液中部悬浮10 -15秒后下沉于瓶底，表明血液比重等于硫酸铜溶液比重，血红蛋白含量符合献血标准；3）血滴悬浮在硫酸铜溶液上部，15秒时不下沉，表明血液比重小于硫酸铜溶液比重，血红蛋白含量不符合献血标准。
A.4.4 记录检测结果。
A.5 硫酸铜溶液配制方法
A.5.1 贮存液（比重为1.1000）配制 称取硫酸铜结晶(CuSO4•5H2O，分析纯)170.0g置于大试剂瓶中，在1000ml容量瓶中加入蒸镏水至刻度，测量此蒸镏水的温度，根据表A-1查出与温度相应的蒸镏水毫升数，不足的容量用滴定管补加入容量瓶中。将容量瓶中蒸镏水全部倾入盛硫酸铜结晶的大试剂瓶中，再将容量瓶倒置2分钟，使蒸镏水全部滴入大试剂瓶中。此时，容量瓶内尚附着蒸镏水约0.8ml，在计算时此容量已加在表内数字中。摇动试剂瓶使硫酸铜完全溶解，即得比重为1.1000的贮存液。如欲知所配制的贮存液比重是否准确，可用液体比重天平进行测定。如配得的贮存液比重并非1.1000，比重每超过0.0001，则在1000ml溶液中加入蒸镏水1ml。例如，所配成的贮存液的比重1.1050，则在此溶液1000ml中加入蒸镏水50ml，即可校正其比重为1.1000。反之，如所配溶液的比重小于1.1000，则每少0.0001，应在1000ml硫酸铜溶液中加入饱和硫酸铜溶液1ml。在盛贮存液的试剂瓶上贴好标签，做好配制记录。
表A-1 配制比重1.1000硫酸铜溶液需用蒸镏水的容量
| 蒸镏水温度℃ | 蒸镏水量（ml） | 蒸镏水温度℃ | 蒸镏水量（ml） |
| 10 | 1003.6 | 26 | 1006.5 |
| 12 | 1003.8 | 28 | 1007.0 |
| 14 | 1004.0 | 30 | 1007.7 |
| 16 | 1004.3 | 32 | 1008.3 |
| 18 | 1004.7 | 34 | 1008.9 |
| 20 | 1005.1 | 36 | 1009.6 |
| 22 | 1005.5 | 38 | 1010.4 |
| 24 | 1006.0 | 40 | 1011.2 |
A.5.2 工作液配制
A.5.2.1 配制100 ml不同比重工作液所需贮存液容量见表A-2。
A.5.2.2 确定工作液配制总量，量取所需量贮存液，加入容器内，慢慢加入蒸镏水至工作液总量，边加边摇匀，以消除硫酸铜溶液加水后容量缩减的影响。配制时贮存液和蒸镏水的温度应相同，但不一定为25℃，10～40℃之间影响不大。
表A-2 硫酸铜应用标准液配制
| 比重 | 贮存液用量（ml） | 比重 | 贮存液用量（ml） | 比重 | 贮存液用量（ml） |
| 1.0350 | 34.30 | 1.0490 | 48.20 | 1.0630 | 62.30 |
| 1.0360 | 35.30 | 1.0500 | 49.20 | 1.0640 | 63.35 |
| 1.0370 | 36.30 | 1.0510 | 50.20 | 1.0650 | 64.40 |
| 1.0380 | 37.25 | 1.0520 | 51.25 | 1.0660 | 65.40 |
| 1.0390 | 38.20 | 1.0530 | 52.25 | 1.0670 | 66.40 |
| 1.0400 | 39.20 | 1.0540 | 53.30 | 1.0680 | 67.40 |
| 1.0410 | 40.20 | 1.0550 | 54.30 | 1.0690 | 68.40 |
| 1.0420 | 41.20 | 1.0560 | 55.30 | 1.0700 | 69.40 |
| 1.0430 | 42.20 | 1.0570 | 56.30 | 1.0710 | 70.40 |
| 1.0440 | 43.20 | 1.0580 | 57.30 | 1.0720 | 71.45 |
| 1.0450 | 44.20 | 1.0590 | 58.30 | 1.0730 | 72.50 |
| 1.0460 | 45.20 | 1.0600 | 59.30 | 1.0740 | 73.50 |
| 1.0470 | 46.20 | 1.0610 | 60.30 | 1.0750 | 74.50 |
| 1.0480 | 47.20 | 1.0620 | 61.30 | | |
A.5.2.3 工作液配制后应检测其是否符合质量要求：1）测定比重是否准确，可用液体比重天平测定，必要时采用相对密度测定法；2）采用已知低于和高于献血者血红蛋白标准的全血进行检测，应符合预期要求。
A.5.2.4 将配置完毕的工作液分装至小试剂瓶，粘贴标签。
A.5.2.5 记录配制过程。
附录B
血液检测方法的确认
B.1 总则
本附录讨论了血站血液检测实验室采用一项新的检测方法，或更换现有检测方法时需要考虑的因素。通常血液检测方法包括完成检测必需的仪器、试剂、校准品、实验程序组合。检测方法必须由实验室选择。必须按照生产商的说明书进行操作，确保检测结果符合实验室的要求。
血站对献血者及其捐献的血液进行强制性血液筛查，包括输血相关感染病原学标志物检测、血型血清学检测和酶学检测。方法学包括ELISA法、凝集法、速率法等，以及用于献血者采血前检查的快速诊断实验。
由于以上方法学原理的不同，方法确认的原则也不同。依据当今国际公认的一些法规和指南，本附录提供了血站血液检测实验室常规使用的检测方法确认的原则和步骤，诣在提高血液检测实验室对检测方法确认的一致性和效率，确保检测方法变化的过程得到有效控制。帮助用户满足文件和法规的要求。
B.2 范围
为血站血液检测实验室检测方法确认提供方案。实验室需选择国家批准的符合国家要求的仪器、试剂盒或检测方法。在新方法投入常规使用报告检测结果之前，需要就检测方法在实验室的使用性能进行确认。不建议实验室对生产商提供的检测方法进行自行改动，如果确实需要修改，应与生产商合作进行新检测方法性能的评价测试，以确认修改后的系统在实验室的适用性和可靠性。
需确认的对象包括：
实验室**引入的检测方法，如实验室从未使用过的试剂、仪器等。
实验室**将某项目引入现用检测方法，如HBsAg项目由A仪器检测改为由B仪器检测。
若多台仪器（相同品牌和型号）检测同一个项目，应对每一台仪器的性能进行确认比较。
B.3 输血相关感染标志物检测方法的确认
以下内容适用于酶联**吸附试验的确认。快速诊断试验和确证试验等定性方法的确认可参照本章节内容。
B.3.1 确认的一般要求
B.3.1.1 实验操作的培训
开始确认新的检测方法之前，操作人员应当有充分的时间熟悉新系统，确定关键的操作步骤。生产商应提供试剂或仪器的操作说明，实验原理，规格，实验步骤，局限性，质量控制和健康**信息。生产商应对操作者进行培训，确保操作人员正确操作。
B.3.1.2 试剂的准备
应选择经国家检定合格的病原学标志物诊断试剂。严格遵从生产商的说明书进行操作。对于正在进行确认的试剂，所有组份应来源于同一批试剂，不能由其他试剂所替代或实验室自己配制。
B.3.1.3 仪器的准备
应选择国家批准使用的检测仪器。实验开始前，按要求对仪器进行维护校准。对于开放试剂的仪器设备，特别注意试剂说明书要求的操作条件与仪器性能是否相适应。如果仪器性能与试剂盒说明书的要求有差异，可以征得试剂生产商协助和同意，对本实验室仪器的实验操作参数进行修正，以达到试剂盒要求的实验状态。
B.3.1.4 质量控制
应建立有效的质量控制程序。除直接采用生产商提供的质控品外，还应选择质量、来源稳定，无基质效应的质控品作为另外的室内质控物。如可能，多实验方法比较过程中，应采用相同质控物。一些定性实验每天只需要使用阴性和阳性质控物，而另一些定性实验可以产生量化的质控结果。对此可以采用统计过程控制方法（SPC），用量化数据监控实验过程。确认实验采用的标本不能等同于质控品使用。实验过程中，应确保过程处于受控状态，否则必须重新实验。
B.3.1.5 保持记录
应记录和监控操作人员在实验过程中的健康**，确保符合法律要求。保留检测全过程的数据和结果，包括检测的速度和使用的适宜性等。
B.3.2 重复性实验
生产商提供的阴性阳性对照实验
B.3.2.1.1 实验程序：采用生产商提供的阴性、阳性对照，在不低于10天实验运行的前提下，进行至少20次检测。
B.3.2.1.2 可接受标准：20次检测结果不能出现大于1次阴性阳性对照不符合生产商要求。否则实验室必须终止实验，咨询试剂生产商，查找原因，采取纠正措施。
B.3.2.2 方法精密性实验
B.3.2.2.1 实验程序：在定性实验中，如果能够产生量化实验结果（如ELISA实验），应采用接近临界值的标本，对精密度进行估计。建议采用S/CO为2～4的标本，不适宜采用低值的阴性标本和高值阳性标本，因为此类标本距决定水平点即临界值（cutoff）的分析浓度相距较远。
B.3.2.2.2 可接受标准：批内变异系数在15%以内，批间变异系数在20%以内。
B.3.3 灵敏度及特异性实验
本实验采用已知真实血清学状态的标本，经检测获得方法灵敏度和特异性方面的信息。也可以将不同方法的灵敏性和特异性进行比较，得到量化的差异结果，判断是否具有统计学意义。
B.3.3.1 标本的选择
灵敏度和特异性实验通常对已知真实血清学状态的标本进行检测。确定标本真实血清学状态可以采用金标准方法或临床诊断方法。参考血清盘或能力验证（PT）的标本可用于本实验。参考血清盘是指经过检测或经过与公认方法比较，或具有临床诊断意义的标本。这些标本已经确立了真实的血清学状态，可追溯至经典方法或临床诊断结果。可以从权威机构、专业研究机构和文献中获得参考血清盘的来源。参考血清盘应包含具有不同分析物浓度的临床标本。如可能，血清盘应包含对检测具有干扰的标本。如可造成假阴性和假阳性结果的自身**性**、螺旋体**、白细胞抗体、风湿性关节炎、多发性骨髓瘤患者的标本。尽管商品化参考血清盘在方法确认过程中，具有很好的时间和资源效率，但其局限性在于可能忽视了实验室目的检测人群中**的流行率和病原学因子抗原谱的分布。因此，使用参考血清盘、能力验证标本结合常规实验室检测标本，可以提供更有意义、更可靠的确认结果。
PT材料可能存在基质干扰，对方法性能产生错误判断。当PT材料为临界标本，或分子结构不同于天然血清，导致抗原决定簇不能被正常识别时，这种干扰尤其明显。
B.3.3.2 标本的数量
标本数量的估算，统计学中称为标本含量的估算依据实验设计的类型、结果变量的性质、研究目的和采用的统计分析方法而不同。对于检测结果为计数资料的实验（如定性实验），一般而言，在实验误差控制较好的情况下，不同血清学状态的标本数量至少为30份。否则可能影响实验的统计学功效。
B.3.3.3 标本的保存
应确保标本可用于常规检测并处于稳定状态，尽可能保持实验标本新鲜。如需冻存，血清或血浆应保存在-20℃的条件下。实验标本的保存状态、冻融次数、使用次数和时间应尽量一致，避免标本产生偏差。如需要方法比较实验，应在相同时间进行，*大限度减小由于标本放置时间不同产生的结果差异。
B.3.3.4 数据的收集和整理
及时记录和检查所有实验数据，尽早发现系统和人为的误差。如果能够确定一些结果是由于可知的差错造成，应详细记录差错原因，数据不能用于后续分析过程。如果不能够确定产生异常结果的原因，在数据组中保留原始结果。
B.3.3.5 数据的分析
B.3.3.5.1 单一检测方法灵敏性和特异性估计
如果明确了每份检测标本真实的血清学状态，检测方法的灵敏度和特异性很容易计算。表Ｂ－1为反映一个定性实验检测已知真实血清学状态标本的结果的2×2四格表资料。通过这组数据可以计算被估计的灵敏度、特异性。
表B－1 试验方法结果与诊断结果的2×2四格表
| | 诊断结果 |
| 方法结果 | 阳性 | 阴性 | 总计 |
| 阳性 | A | B | A+B |
| 阴性 | C | D | C+D |
| 总计 | A+C | B+D | N |
B.3.3.5.1.1 灵敏度和特异性
估计灵敏度＝100%〔A/(A+C)〕
估计特异性＝100%〔D/(B+D)〕
灵敏度和特异性95%置信区间可通过二项分布计算。
B.3.3.5.2 两方法灵敏度和特异性的比较
可采用完全随机设计和配对设计实验，比较两检测方法的灵敏度和特异性。完全随机设计时，可采用完全随机设计x2检验。两方法采用不同的标本，标本相对独立。这种情况下两方法灵敏度和特异性的比较实际是两样本率的比较。配对设计时，可采用配对设计的McNemar x2检验。两方法采用相同的标本，得到两个相关的灵敏度和特异性，这时注意当标本数较少时，需要计算校正x2或采用**概率法检验。详细计算见B.3.3.5.3。
注意如果需要判断检测方法的准确性，单凭比较灵敏度和特异性是不够的。除非一个方法的灵敏度和特异性均大于或小于另一方法，否则只能比较相同灵敏度时的特异性，或相同特异性时的灵敏度。当灵敏性和特异性均不相同时，很难比较两方法准确性。这时可采用受试者工作特征曲线法（ROC曲线法）进行比较。该法是近年来公认的评价和比较检测方法准确度的较好方式。该方法可以考虑检测方法在所有临界值时的灵敏度和特异性。通过比较不同方法ROC曲线下的面积，确定和参考方法的特性。鉴于此项内容不在本规程要求的范围，实验室人员如需要了解更多信息，可以查找相关资料。
如果需要量化两方法灵敏度和特异性之间差异，可以对灵敏度或特异性的差异进行估计。以配对设计实验为例，两方法采用相同的标本进行检测的结果可以汇集成表B－2。如果两方法采用的标本不同，则不能采用表2的方式整理数据。
表B－2 两方法结果和诊断结果的三项比较
| 方法结果 | 总标本数 | 真实诊断结果 |
| 方法1 | 方法2 | | 阳性 | 阴性 |
| 阳性 | 阳性 | a=a1+a2 | a1 | a2 |
| 阳性 | 阴性 | b=b1+b2 | b1 | b2 |
| 阴性 | 阳性 | c=c1+c2 | c1 | c2 |
| 阴性 | 阴性 | d=d1+d2 | d1 | d2 |
| 总标本数 | | N | n1 | n2 |
B.3.3.5.2.1 两方法灵敏度差异估计
两方法灵敏度估计
灵敏度1=100%[(a1+b1)/n1]
灵敏度2=100%[(a1+c1)/n1]
两方法灵敏度差异估计
灵敏度1－灵敏度2=100%[(b1－b1)/n1]
B.3.3.5.2.2 两方法特异性差异估计
两方法特异性估计
特异性1=100%[(c2+d2)/n2]
特异性2=100%[(b2+d2)/n2]
两方法特异性差异估计
特异性1－特异性2=100%[(c2－b2)/n2]
B.3.3.5.3 不同检测方法检测结果的统计分析
通常采用配对设计四格表x2检验和Kappa检验评价两个定性检测方法性能的差异或一致性。
如果已知标本的血清学状态，或者已存在特设或隐含的金标准结果，可采用配对设计四格表x2检验中的McNemar x2检验评价两方法结果的不一致性，Kappa检验评价两方法结果的一致性。
如果未知标本的血清学状态，检测结果有序变量的档次划分也是相同的，也可以采用Kappa检验评价两种检测方法结果的一致性。另外，两方法的符合性指标也能够量化两种检测方法结果的一致程度。
B.3.3.5.3.1 配对设计四格表x2检验（McNemar x2检验）：对于隐含金标准或特设金标准的2×2四格表资料，可采用McNemar x2检验，判断两种检测方法结果不一致部分是否具有统计学意义。该法适用于标本含量适中的资料，因为本法仅仅考虑两检测方法不一致的情况，而未考虑两方法检测结果一致的情况。当n很大，两方法一致率较高，不一致结果数量较小，即使McNemar x2检验具有统计学意义，但实际意义往往不大。通常适用于b+c≥40。
注意当25≤b＋c＜40，采用McNemar检验分析配对设计四格表资料需作连续性校正。
若b+c＜25，应采用**概率法检验。
B.3.3.5.3.2 Kappa检验：Kappa统计量是Cohen1960年提出的一种校正机遇之后衡量两种检测方法一致性的指标。Kappa（常缩写成K）值在－1到＋1之间，如果K＝－1，说明两种检测方法检测的结果完全不一致；K＝0，说明观察的一致性完全由偶然误差造成；K＝1，说明完全排除机遇一致性后的真正一致性。一般对总体而言，若K＞0.75，表明一致性为优；若K在0.4～0.75之间，表明一致性良好；若K＜0.4，表明一致性较差。
B.3.3.5.3.3 两种检测方法结果的符合性估计
如果需要量化两方法检测结果的符合程度，可以对两方法检测结果的符合性进行估计。
| | 方法2 | | |
| 方法1 | 阳性 | 阴性 | 总计 |
| 阳性 | a | b | a+b |
| 阴性 | c | d | c+d |
| 总计 | a+c | b+d | |
B.3.3.5.3.4 符合性＝100%[(a+d)/n]
B.4 ALT检测方法的确认
以下内容适用于ALT速率法确认。其它定量检测方法确认可参照本规程。
B.4.1 确认的一般要求
B.4.1.1 实验操作的培训
开始确认新的检测方法之前，操作人员应当有充分的时间熟悉新系统，确定关键的操作步骤。生产商应提供试剂或仪器的操作说明，实验原理，规格，实验步骤，局限性，质量控制和健康**信息。生产商应对操作者进行培训，确保操作人员正确操作被确认系统。
B.4.1.2 试剂的准备
应选择国家批准生产的ALT诊断试剂。严格遵从生产商的说明书进行操作。对于正在进行确认的试剂，所有组份应来源于同一批试剂，不能由其他试剂所替代或实验室自己配制。
B.4.1.3 仪器的准备
应选择国家批准使用的检测仪器。实验开始前，按照要求对仪器进行校准。校准品必须能够溯源至国家或国际标准。可以由校准品的生产商提供相关的校准程序和溯源证明。对于开放试剂的仪器设备，特别注意试剂说明书要求的操作条件与仪器性能是否相适应。如果仪器性能与试剂盒说明书的要求有差异，可以征得试剂生产商协助和同意，对本实验室仪器的实验操作参数进行修正，以达到试剂盒要求的实验状态。
B.4.1.4 质量控制
应建立有效的质量控制程序。选择质量、来源稳定，无基质效应的质控品作为室内质控物。确认实验采用的标本不能等同于质控品使用。应确保实验过程处于受控状态，否则必须重新实验。
B.4.1.5 保持实验记录
应记录和监控操作人员在实验过程中的健康**，确保符合法律要求。保留检测全过程的数据和结果，包括检测的速度和使用的适宜性等。
B.4.2 正确度的估计
正确度估计*常用的方法：
方法比较实验：采用新的检测方法和参加过能力验证的检测方法或公认的参考方法，同时检测一批不同ALT浓度的标本。通过结果的差异了解新系统引入后的偏倚是否在允许误差范围内。通常将新系统方法称为比较方法（y），与之比较的系统方法称为参考方法（x），该实验也称为方法学比较实验。
能力验证活动：直接参加权威机构组织的能力验证活动，能力验证的成绩可以证明新的检测方法检测结果的准确性。
以下为方法比较实验的设计和数据分析过程。
B.4.2.1 标本的选择
B.4.2.1.1 标本数量：实验标本数至少40份，更多的标本量可以使实验结果更加可靠。每份标本应有足以完成双份测定的量。如果不够，可以将分析物浓度接近的两份标本混合使用。
B.4.2.1.2 标本分析物浓度范围：如可能，应选择有50％实验标本的分析物浓度不在参考范围内。
B.4.2.2 实验程序
时间至少5天。采用两种方法，将标本按照序号递增和递减的顺序测定2次。如第1次检测序号为1、2、3、4、5、6、7、8，第2次为8、7、6、5、4、3、2、1。当天的方法比较实验应在2小时内完成。
B.4.2.3 数据分析
B.4.2.3.1 初步判断：剔除有明显人为误差的结果。内部质控失控时，必须重新检测。
B.4.2.3.2 离群点的剔除：设参考方法测定结果为x值，**次测定值为x1，**次测定值为x2。比较方法测定结果为y值，**次测定值为y1，**次测定值为y2。
B.4.2.3.3 方法内重复测定值离群点的去除
计算△xi=∣xi1-xi2∣； △yi=∣yi1-yi2∣
计算
；
计算4
，4
以4
和4
为离群限值，如果没有超出，继续方法间配对结果离群点检验；否则继续相对差异检验，进行如下*终判断
计算
；
计算
；
*终以4
和4
为判断离群点限值
B.4.2.3.4 方法间配对结果离群点的去除
计算Eij＝∣yij-xij∣，i为标本序号1～40，j为重复结果序号1或2。
计算
以4
为离群限值。如果全部实验数据中离群点超过2个，应补充实验数据。
B.4.2.3.5 初步判断线性回归状况
x－y散点图
以参考方法所有结果为x值，比较方法所有结果为y值，绘制散点图。
以参考方法每个标本两次检测结果的均值为x值，比较方法每个标本两次检测结果的均值为y值，绘制散点图。比较两图有无明显差异。如无明显差异，说明方法比较实验的随机误差对比较结果影响不大。
x均值（x－y）均值差散点图
以参考方法每个标本两次检测的均值为x值，两方法实验结果均值差（x－y）为y值，绘制散点图。观察均值差随x值增大的变化。如果点的分布表现出一定的趋势，预示着两方法之间系统误差的存在。
B.4.2.3.6 标本分析物浓度分布检验
实验点的离散度和对应分析物浓度分布的宽度都会影响r值的大小。一般如果r≥0.975（r2≥0.95），x取值范围适宜，否则应扩大数据范围。
B.4.2.3.7 线性回归计算
每份标本用两个方法进行两次测定。将参考方法的x1和比较方法的y1对应，参考方法的x2和比较方法的y2对应，组成成对数据。采用所有成对数据进行直线回归。得回归方程
。理想状态下
，即b＝1，
＝0。如果b≠1，
≠0，说明两方法间存在系统误差，需要对误差进行评估。如了解Y方法引入后相对于X方法在临床决定水平浓度Xc处的系统误差（SE）。
B.4.2.4 可接受标准
r≥0.975或r2≥0.95。医学决定水平处新方法引入的系统误差小于CLIA’88允许误差的1/2。
B.4.3 精密度的估计
精密度估计*常用的方法是采用稳定的标本进行重复检测。求得均值（x）、标准差(s)和变异系数（CV）。精密度的好坏通常采用不精密度表示，不精密度通常以CV体现。应在明确标本的来源、浓度、实验周期的前提下，确定检测方法的不精密度。
B.4.3.1 标本的选择
B.4.3.1.1 标本分析物浓度范围：鉴于血站血液检测实验室检测对象为健康的献血人群，可采用中、低两个ALT浓度的标本进行精密度实验。标本的基质应近似于人源标本。
B.4.3.1.2 标本的保存：精密度实验需要在若干天内完成，对于冰冻保存的标本和冻干复溶标本，应严格控制操作手法均一、复溶时间、加液的准确性、混匀的力度等，力求实验标本的稳定、均一。
B.4.3.2 实验程序
B.4.3.2.1 对每个水平的标本分别做批内和天间的重复测定。精密度实验与常规标本检测同时进行，不可替代实验的质量控制过程。
B.4.3.2.2 批内实验：将实验标本插入常规检测标本一同检测。一批内连做20次。对应质控结果为受控状态。
B.4.3.2.3 批间实验：每天对实验标本做1次检测，连做20天。每天对应质控结果为受控状态。
B.4.3.3 数据分析
B.4.3.3.1 标准差计算
批内和天间标准差均可采用以下公式计算
B.4.3.3.2 变异系数计算
批内和天间变异系数均可采用以下公式计算
×100
B.4.3.4 可接受标准
参照Westgard和Ceroblewski等提出高效检验对精密度要求的观点，批内不精密度CV应小于CLIA允许误差的1/4，批间不精密度CV应小于CLIA允许误差的1/3。对于ALT实验，CLIA允许误差限值T±20%，因此ALT检测方法的批内不精密度CV应小于5%，批间不精密度CV应小于6.7%。
B.4.4 检测可报告范围
检测可报告范围确认实验通常采用配制包含不同分析物浓度的系列标本进行检测，将按稀释比例计算的预期值和实际测量值设置为两个变量进行线性回归。回归直线应当为过原点，斜率为1的直线。直线所达的限值即为结果的检测范围。
B.4.4.1 标本的选择
准备一份ALT<30IU的低浓度血清（L）和ALT在500IU左右的高浓度血清（H）。将高低两份血清按照5L， 4L+1H， 3L+2H， 2L+3H， 1L+4H， 5H的比例配制混合，形成系列血清。
B.4.4.2 实验程序
检测系列血清，每份标本重复4次。
B.4.4.3 数据分析
B.4.4.3.1 剔除异常点：剔除明显异常的检测结果，并补充数据。
B.4.4.3.2 计算预期值：计算低值和高值标本的结果均值。按照稀释关系，计算每个标本的分析物理论浓度，即为预期值。
B.4.4.3.3 预期值－实测值的线性回归：每个标本有4个重复实验的实测值。每个实测值与其预期值相对应，形成成对数据。以x表示预期值，y表示实测值，描点绘图。得到回归方程
。
B.4.4.3.4 初步判断：理想状态下
中b＝1，
＝0。但实际工作中很难达到。因此如果b在1.00±0.03的范围内，
近于0，则可直接判断该方法可报告范围在实验涉及浓度范围内。
B.4.4.3.5 如果b不接近1，
较大，应具体分析高浓度还是低浓度的预期值和实测值存在较大偏倚。可以舍去某组数据，重新进行回归计算。如果缩小范围后，b和
能够满足要求，即说明缩小的浓度范围即是实际的检测范围。
B.4.4.3.6 可以通过以下统计假设检验进行判断。
B.4.4.3.6.1 截距a和0差异的t检验
假设H0：a=0；H1： a≠0；
计算
计算
计算
，
B.4.4.3.6.2 斜率b和1差异的t检验
假设H0：b=1；H1： b≠1；
计算
计算
计算
，
B.4.5 正常值参考范围确认
采用新方法对20份健康献血者血液标本进行检测。*多允许1个结果不在试剂盒提供的参考范围内。
B.5 ABO血型和RhD抗原检测方法的确认
以下内容适用于献血者血型血清学方法确认。
B.5.1 确认的一般要求
B.5.1.1 实验操作的培训
开始确认新的检测方法之前，操作人员应当有充分的时间熟悉新系统，确定关键的操作步骤。生产商应提供试剂或仪器的操作说明，实验原理，规格，实验步骤，局限性，质量控制和健康**信息。生产商应对操作者进行培训，确保操作人员正确操作。
B.5.1.2 试剂的准备
应选择国家批准使用的血型试剂，严格遵从生产商的说明书进行操作。对于正在进行确认的试剂，所有组份应来源于同一批试剂，不能由其他试剂所替代（即使另一种试剂为同一厂家生产）或实验室自己配制。实验室对试剂自行修改，如稀释试剂，应取得生产商的认可，因为任何修改可以导致对试剂的质量保证失效，并产生相关责任。
B.5.1.3 仪器的准备
应选择国家批准使用的检测仪器。实验开始前，按照要求对仪器进行维护校准。对于开放试剂的仪器设备，特别注意试剂说明书要求的操作条件与仪器性能是否相适应。如果仪器性能与试剂盒说明书的要求有差异，可以征得试剂生产商协助和同意，对本实验室仪器的实验操作参数进行修正，以达到试剂盒要求的实验状态。
B.5.1.4 质量控制
应建立有效的质量控制程序。确保常规平行实验中已知抗原和已知抗体的质控物反应正确，否则必须重新实验。
B.5.1.5 保持实验记录
应记录和监控操作人员在实验过程中的健康**，确保符合法律要求。保留检测全过程的数据和结果，包括检测的速度和使用的适宜性等。
B.5.2 平行确认实验
所有实验室应采用平行实验的方式，用常规标本，将新方法与现用方法进行比较，确认新方法的常规使用状态。实验时间*短1周。操作程序和实验结果应文件化。应定期进行关键标本（弱抗原或弱抗体标本）重复实验，确认方法的稳定性和耐用性。
B.6 确认记录
B.6.1 实验过程记录应包括：
B.6.1.1 检测标本类型及各类型数量；
B.6.1.2 检测日期；
B.6.1.3 操作实验者的级别和能力；
B.6.1.4 使用试剂的详细资料，包括：批号、效期等；
B.6.1.5 采用修正条件的详细资料，如温度、孵育时间，离心力、加速减速率、离心时间；
B.6.1.6 设备详细资料；
B.6.1.7 判读方法的详细资料，包括适当的cutoff值。
B.6.2 实验结果记录应包括：
B.6.2.1 所有结果并绘制表格，包括阳性反应和阴性控制结果；
B.6.2.2 差异结果、数量和类型，以表格形式体现。
B.6.3 确认结论记录应包括：
B.6.3.1 用户界面友好性；
B.6.3.2 操作人员需要的水平，培训要求；
B.6.3.3 新产品/系统的实用性、耐用性，自动化效能；
B.6.3.4 不同情况下使用的适宜性（批量标本处理或单一紧急标本处理）；
B.6.3.5 新产品/系统的贮存期，包括贮存末期的性能；
B.6.3.6 方便的仪器维护；
B.6.3.7 健康**方面，包括数据采集和处理**性；
B.6.3.8 任何过程中暴露的系统弱点和对系统改进的建议，并通知生产商，如果生产商对此实施了改进方案，重新实验的结果应在报告中体现。
附录C 血液检测试剂（酶联**/核酸试剂）
进货验收与放行记录表
| 1 订购 试剂品名 规格 生产方 |
| 销售方 销售员姓名及身份证号码 |
| 试剂产销证照是否齐全有效？ 采购合同是否有效？ |
| 订购数量 订购价格 订购者 订购日期 |
| 2 验货与隔离 验货结论 仓管员 验货日期 |
| 2.1 外观检查（箱体完整无损，运输冷链符合要求，试剂包装盒完整无损，无液体泄漏） |
| 2.2 到货数量 销售凭证内容(购货单位、试剂、供货商等名称，规格、批号、数量、价格) |
| 2.3 批号 出厂质量检验报告 SFDA批签发文件 |
| 2.4 隔离存放（将试剂存放于 ℃隔离冰箱） |
| 3 抽样与收样（任意抽样1件） 抽样者 日期 收样者 日期 |
| 4 测试 测试结论 测试者 日期 |
| 4.1 试剂说明书版本检查 |
| 4.2 试剂盒组成、组分性状与说明书一致；无泄漏，足量，标识正确 |
| 4.3 采用测试样本，按照试剂说明书进行检测 |
| 4.3.1 试剂盒阴性、阳性对照品检测结果符合试剂说明书要求 |
| 4.3.2 以现用室内质控品检测，结果符合室内质控程序的要求 |
| 4.3.3 其它检测要求： |
| 5 审批 |
| （1）准予放行使用。 实验室主管： 日期： 质量部门主管： 日期： |
| （2）退货。 实验室主管： 日期： 质量部门主管： 日期： |
| 6 放行 ①“可用”标识；② 账物入合格品库；③ 向BMIS录入试剂信息 仓管员 日期： |
| 7 附件：① 销售员身份证复印件；② 出厂质量检验报告；③ SFDA批签发文件；④ 试剂说明书；⑤ 测试记录 |
| 8 附注 ：国家食品药品监督管理局简称SFDA |
附录D
血液检测室内质控方法
D.1 总则
血站血液检测主要包括用于血清学抗体或抗原检测的ELISA试验，用于HBV/HCV/HIV DNA或RNA检测的NAT试验，以及ALT酶学试验。ELISA试验室内质控通常采用试剂盒阴阳性对照、弱阳性质控品实时监控实验的有效性，同时采用弱阳性质控品和Levey-Jennings质控图监控实验的稳定性。ALT作为定量试验通常采用Levey-Jennings质控图监控ALT实验的精密性和有效性。NAT试验以及其它定性试验可借鉴ELISA 的质控方法。
D.2 ELISA实验过程稳定性控制
推荐采用Levey-Jennings质控图监控ELISA实验过程的稳定性，发现随机误差和系统误差。实验室如需采用更多种类的控制图进行质控，可查阅相关文献。
D.2.1 质控规则
D.2.1.1 质控规则的表示方法
用
方式表示质控规则，“A”代表质控测定值个数，“L”是从正态统计量得到的质控界限。例如，
质控规则指一个质控结果超出了均值加减3倍标准差界限。
D.2.1.2 质控规则的选用
实验室可选择Levey-Jennings质控图常规使用的13s规则作为在控与失控的判断规则，如发现违背13s规则的情况，说明实验过程没有处于受控状态，应查找原因予以解决。实验室应根据实际情况，同时选择一个监控实验系统误差的规则，如7x规则，以发现由于仪器、试剂、环境条件等因素引起的系统误差。上述常用质控规则的释义如下：
13s：一个质控值超过
。用于提示可能存在随机误差。
7x：7个连续的质控值落在均值一侧，用于提示可能存在系统误差。
D.2.2 质控图的建立
D.2.2.1 设定质控图均值和标准差
在实验室常规检测条件下，连续测定同一批号的弱阳性质控品10～20天，收集至少20个质控数据，对数据进行离群值检验，剔除超过±3s以外的数据，计算均值及标准差，以此控制后续实验过程，直至试剂或质控品批号更换。实验室如采用积累质控数据计算均值和标准差，具体方法可参见本章节ALT质控均值的计算。但需注意，由于ELISA试剂存在较大的批间差异，积累质控数据计算的方式可能增大室内质控的标准差和变异度，因此如两批试剂的质控均值和标准差有显著差异，建议针对新批号试剂重新计算质控均值和标准差。
实验室构建质控图的过程中，如果发现实验变异度过大，应采取措施，稳定各个环节实验条件，将变异度控制在可接受范围内。通常情况下，ELISA实验的变异系数宜控制在20%以内。
D.2.2.2 设定质控图控制限
控制限通常是以标准差的倍数来表示。Levey-Jennings质控图将
设置为控制限，即控制上限值为
，控制下限值为
。如果质控图的控制下限值小于1，说明实验室采用的控制低限（LCL）已经低于实验性能低限（LSL），实验过程变异较大，实验室应当查找原因，改进过程，降低实验变异度（CV）。
D.2.2.3 绘制质控图
以Y轴为质控品的测定值（S/CO值），X轴为质控个数或单位时间。Y轴刻度上各水平线分别为均值、
、
、
上下限，描点绘图。
当采用13s规则可采用单点质控图，将质控数据逐一点于质控图上进行观察，以发现实验随机误差。
当采用7x规则，可根据实验室情况，采用单点质控图或将一个单位时间内（通常为**）所有质控数据的均值点于质控图上进行观察，以发现检测系统的变化和趋势。
D.2.2.4 质控图框架的重建
如果更换新批号试剂，鉴于ELISA 实验的特性和试剂批间的不稳定性，可能两批试剂质控均值和标准差存在显著差异，如需要应重新建立质控图框架。
如果更换新批号质控品，在试剂批号不变的情况下，可采用将新批号质控品和旧批号质控品同时检测的方式，以确保在旧批号质控品使用结束前，获得计算新批号质控品均值和标准差的数据，建立质控图框架。
如果质控图使用过程中，出现均值的偏移和标准差变化，需分析并消除产生偏差的原因，必要时应重新调整质控图框架。
D.2.3 失控情况的分析处理
如出现违背实验有效性判定规则，应视为实验无效。查找原因，采取纠正措施后重新实验。
如违背实验室选择的质控规则，出现随机误差或系统误差，实验室应分析产生误差原因。引起误差的因素通常包括操作上的失误，试剂、校准物、质控品的失效；试剂、质控品更换批号或保存末期发生变化；仪器使用维护不当；质控图建立过程中采用的数据不足造成均值和标准差不适宜等。应采取纠正措施，消除产生误差的因素。如果所选择弱阳性质控品超过规定的S/CO值上限，应关注违背－3s规则时的实验状况，必要时对阴性结果重新检测。应保存失控情况分析处理记录。
D.3 ALT实验室内质控
D.3.1 质控规则的选用
D.3.2 质控图的建立
D.3.2.1 设定质控图均值：在实验室常规检测条件下，测定同一批号的质控品10～20天，收集至少20个质控数据，对数据进行离群值检验，剔除超过±3s以外的数据，计算临时均值及标准差，以此控制此后一个月的室内质控情况。一个月结束后，汇集当月所有质控数据，计算所有在控数据积累的质控均值和标准差，以此控制下一个月的室内质控情况。重复以上操作三到五个月，*终汇集前20个数据和三到五个月的质控数据，计算积累的质控均值和标准差，以此作为常规均值和标准差，控制以后的实验过程，直至质控品批号更换。
D.3.2.2 设定质控图控制限：控制限通常以标准差的倍数表示。Levey-Jennings质控图将
设置为控制限，即控制上限值为
，控制下限值为
。ALT室内质控的控制限随质控图均值和标准差的变化而变化。
D.3.2.3 绘制质控图
D.3.2.4 质控图的重建：鉴于ALT实验的特性，质控图可包含多个试剂批号的变化。如果更换新批号质控品，可采用将新批号质控品和旧批号质控品同时检测的方式，以确保在旧批号质控品使用结束前，获得计算新批号质控品均值和标准差的数据，建立质控图。
D.3.2.5 如果质控图使用过程中，出现均值的偏移和标准差变化，需分析并消除产生偏差的原因，必要时应重新构建质控图。
D.3.3 失控情况的分析处理：如出现违背质控规则的情况，需分析产生误差的类型及原因，并视为实验失控和无效。应查找原因，采取纠正措施后重新实验。引起误差的因素通常包括操作上的失误、试剂、校准物、质控品的失效；试剂、质控品更换批号或保存末期发生变化；仪器使用维护不当；由于质控图建立过程中采用的数据不足造成均值和标准差不适宜等。应保存失控情况分析处理记录。
D.4 特殊情况下的室内质控
对于不能每天进行血液检测、质控数据量少的实验室，必须保证每次实验满足试剂盒质控要求，弱阳性质控品S/CO≥1。在次基础上，可适时采用Grubbs氏法进行室内质控。
该方法只需连续测定3次，即可对第3次检验结果进行检验和控制。具体计算方法如下。
1）计算出测定结果（至少3次）的平均值（
）和标准差（s）。
2）计算SI上限值和SI下限值：
SI上限 = （X*大值-
）/s
SI下限 = (
-X*小值)/s
3）查表1，将SI上限和SI下限与SI值表中的数值进行比较。
表1 SI值表
| n | n3s | n2s | n | n3s | n2s |
| 3 | 1.15 | 1.15 | 12 | 2.55 | 2.29 |
| 4 | 1.49 | 1.46 | 13 | 2.61 | 2.33 |
| 5 | 1.75 | 1.67 | 14 | 2.66 | 2.37 |
| 6 | 1.94 | 1.82 | 15 | 2.70 | 2.41 |
| 7 | 2.10 | 1.94 | 16 | 2.75 | 2.44 |
| 8 | 2.22 | 2.03 | 17 | 2.79 | 2.47 |
| 9 | 2.32 | 2.11 | 18 | 2.82 | 2.50 |
| 10 | 2.41 | 2.18 | 19 | 2.85 | 2.53 |
| 11 | 2.48 | 2.23 | 20 | 2.88 | 2.56 |
当SI上限和SI下限值＜n2s时，表示处于控制范围之内，可以继续进行测定，并重复以上计算；当SI上限和SI限有一值处于n2s和n3s值之间时，说明该值在2s–3s范围，处于“警告”状态；当SI上限 和 SI下限有一值＞n3s时，说明该值已在3s范围之外，属“失控”。数字处于 “失控”状态应舍去，重新测定质控品和标本。舍去的只是失控的这次数值，其它次测定值仍可继续使用。当检测的数字超过20次以后，可转入使用常规的质控方法进行质控。
D.5 室内质控数据的管理
D.5.1 实验室应定期对所有检测项目的室内质控数据进行统计分析，对质控图进行评价和维护，以确保室内质控的有效运行。
D.5.2 实验室应定期对所有检测项目的室内质控数据、质控图以及失控报告单整理后进行存档。
D.5.3 实验室负责人（或由负责人指定的授权人）应定期对室内质量控制的记录进行审核并签字。
附录E
微板法ABO血型定型试验
E.1 本附录描述了基于手工操作或半自动操作的U型微板技术的基本步骤。
E.2 正定型（细胞定型）
E.2.1 在微板的3个干净孔内分别加入1滴抗-A、抗-B，（如需要，可在第三孔内加1滴抗-AB进行平行试验）。
E.2.2 在含有血型定型试剂的各孔内加入1滴1.6%～1.8%红细胞悬液；轻叩板边，混匀孔内物质。可以采用自动化的样本处理系统完成抗血清和受检红细胞悬液的配制和加样。
E.2.3 离心和重悬。离心结束后用手轻叩微板或借助微板振荡器重悬细胞扣。
E.2.4 肉眼观察红细胞是否凝集，判读结果并记录，并与反定型结果比较。也可以采用具有血型判读功能的酶标仪进行结果的自动判读。
E.3 反定型（血清定型）
E.3.1 在微板的两个干净孔内，每孔内加1滴受检者血清或血浆；
E.3.2 在含有血清或血浆的各孔内分别加1滴1.6%～1.8%A1、B细胞（如需要，可添加A2或O细胞进行附加试验）；轻叩板边，混匀孔内物质。可以采用自动化的样本处理系统完成受检血清/血浆和试剂红细胞悬液的配制和加样。
E.3.3 离心和悬浮。采用既定的离心条件对微板进行离心。结束后用手轻叩微板或借助微板振荡器重悬细胞扣
E.3.4 肉眼观察红细胞是否凝集，判读结果并记录，并与正定型结果比较。也可以采用具有血型判读功能的酶标仪进行结果的自动判读。
E.4 结果判读与解释
E.4.1 红细胞溶血或在微板底部形成凝集细胞扣都表示阳性结果；
E.4.2 重悬细胞扣后，无红细胞凝集或溶血表示阴性结果；
E.4.3 若正反定型结果不符，应分析不一致的原因，并进一步试验以确定血型。
E.5 注意事项
E.5.1 如果使用稀释的抗血清工作液，应关注抗血清试剂的强度和粘度；蛋白浓度过高或过低都会影响检测结果。稀释后工作液的保存不应超过1周。
E.5.2 抗血清工作液的配制和红细胞悬液的配制应标准化。
E.5.3 微板使用前可以用0.1%的牛白蛋白或人血清进行预处理以减少塑料的非特异性吸附。加热洗涤或用湿巾擦拭U型孔底可减少静电作用。使用后的微板必须彻底清洗方可重复使用。
E.5.4 离心条件和离心后对微板的悬浮条件应标准化。通常软质U型板离心条件700g×5s；硬质U型板离心条件400g×30s；硬质V型板离心条件700g×10s。悬浮条件应关注悬浮的频率、幅度和时间。
E.5.5 如果血型试剂未注明可用于微板试验，或检测设备为非系统型，实验室应对微板法血型定型的各个试验条件进行优化和验证。以确保血型检测的准确性。
附录F
血液质量控制检查方法
F.1 外观
F.1.1 检查方法：于光线明亮处目视检查
F.2 标签
F.2.1 检查方法：于光线明亮处目视检查
F.3 容量
F.3.1 检查方法
F.3.1.1 称量血袋重量
F.3.1.2 计算公式
注：如果适用，还应减去抗凝剂容量。
F.4 无菌试验
F.4.1 检测方法
无菌试验方法遵从中华人民共和国药典（2010年版）三部“无菌检查法”要求。使用**培养仪进行无菌试验应参照厂家使用说明书。
F.4.2 注意事项
留取血液样本前，应当将血袋中的血液充分混匀，混匀时动作应轻柔，不能产生泡沫，也不能使其溶血。
F.5 Hb测定
检测方法见《国内临床检验操作规程》（第3版）“血红蛋白测定”。使用血细胞计数仪测定的应参照厂家使用说明。
F.6 游离Hb测定
检测方法参照《国内临床检验操作规程》（第3版）“血浆游离红蛋白测定”。
F.7 血细胞比容
检测方法见《国内临床检验操作规程》（第3版）“红细胞比容”。使用血细胞计数仪测定的应参照厂家使用说明。
F.8 储存期末溶血率
F.8.1 检测方法
在血液储存期的*后一周内取样，按 F.5、F.6和F.7测定总血红蛋白、上清游离血红蛋白、血细胞比容。
F.8.2 计算公式
F.9 白细胞残留量
F.9.1 检测方法
用留取的去白细胞血液标本进行残余白细胞检测。
材料：大容量 Nageotte血细胞计数盘、显微镜、结晶紫染色液。
结晶紫染色液配制
储存液配制：250mg结晶紫溶于250mL的50%醋酸溶液中。室温放置可保存6个月。
使用液配制：1份储存液加9份3%的醋酸溶液，*终浓度为：结晶紫0.01mg%（W/V），醋酸7.7%（V/V）。然后使用0.22μ过滤器过滤。
计数方法：50μl血液标本加入450μl使用液中，充分混匀。在Nageotte计数池中加入上述混合液，将计数池置于带盖潮湿容器中，于室温放置10～15分钟。在200倍显微镜下对计数池中两个计数区（每区有20个长方形格）的白细胞计数，40行相当于50μl。
计算：
Nageotte计数盘
公式中：10为稀释倍数，50μl为计数池2个区的容积
每袋中残余白细胞数按下列公式计算：
残余白细胞数/袋=白细胞数/mL×去白细胞血液容量（mL）/袋
或使用其它经验证可使用的方法。
F.10 红细胞计数
检测方法见《国内临床检验操作规程》（第3版）“红细胞计数”。使用血细胞计数仪测定的应参照厂家使用说明。
F.11 血小板计数
检测方法见《国内临床检验操作规程》（第3版）“血小板计数”。使用血细胞计数仪测定的应参照厂家使用说明。
F.12 血浆蛋白测定
检测方法见《国内临床检验操作规程》（第3版）“血清总蛋白的测定”。
F.13 上清液蛋白含量
检测方法参照《国内临床检验操作规程》（第3版）“脑脊液总蛋白测定”。
F.14 pH测定
F.14.1 测定方法
测定方法见《中华人民共和国药典》（2010年版）三部附录“pH值测定法”。
F.14.2 注意事项
使用国家计量部门检定合格的pH 仪。样品从血袋中移出后应立即进行检测，以防标本在空气中暴露时间过长而CO2逸出，导致pH测定值比实际值偏高。
F.15 Ⅷ因子活性测定
测定方法见《国内临床检验操作规程》（第3版）“凝血因子Ⅷ的活性测定（一期法）”。使用血凝仪测定时参照厂家使用说明书。
F.16 纤维蛋白原测定
测定方法见《国内临床检验操作规程》（第3版）“血浆纤维蛋白原含量测定”。使用血凝仪测定应参照厂家使用说明书。根据冷沉淀的容量计算出每袋纤维蛋白原含量。
F.17 甘油残留量
F.17.1 过碘酸钠法
原理：根据过碘酸钠能氧化有机化合物中的羟基、胺基，使甘油氧化成酸和醛，以溴甲酚紫作指示剂；并用氢氧化钠进行滴定。从消耗氢氧化钠的毫升数，即可算出样品中所含甘油的量。
试剂：16.5%钨酸钠溶液：称取16.5克钨酸钠，用蒸馏水溶解，再加蒸馏水稀释至100mL。
0.5mol/L H2SO4：吸30mL浓硫酸缓缓注入水中，冷却至室温，加水稀释至1000mL。
0.1mol/L NaOH：配制方法见《中华人民共和国药典》（2010年版）二部 附录 “滴定液”
0.1%溴甲酚紫溶液：0.1g溴甲酚紫溶入20mL0.02mol/L NaOH溶液中，再加入蒸馏水稀释至100mL。
14%过碘酸钠：14g过碘酸钠先加入少量蒸馏水中溶解，加入2mL浓硫酸使其完全溶解，用蒸馏水稀释至100mL。
操作方法：按下表操作步骤制备血滤液
血滤液制备
| 试剂 | mL | 备注 |
| 测定样品 | 15.0 | |
| 蒸馏水 | 75.0 | |
| 16.5% Na2WO4 | 6.0 | |
| 0.5mol/L H2SO4 | 7.5 | |
| 用力振摇，进行过滤 | | |
注：实验操作时应在三角烧瓶中进行
分析测定的步骤如下表：
| 试剂 | 空白（mL） | 样品（mL） | 备注 |
| 过滤后的上清液 蒸馏水 0.1%溴甲酚紫溶液 0.1mol/L NaOH溶液 14%过碘酸钠 38℃恒温 0.1%溴甲酚紫溶液 0.1mol/L NaOH溶液 | 100.0 10.0 | 15 100.0 10.0 | 2滴 滴定至蓝色 15分钟 2滴 滴定至蓝色 |
计算：
0.1mol/L NaOH溶液相当于0.00921g甘油
F.17.2 渗透压测定法
正常血清的渗克分子浓度为289mmol（289mOsm），甘油含量为1%（10g/L）时，其渗克分子浓度为420mmol（420mOsm），因此渗透压测定法可作为一种检测去甘油红细胞甘油残存量的参考方法，操作方法应参照渗透压仪器生产厂家使用说明书。
F.17.3 折射仪测定法
使用折射仪是测定渗克分子浓度的一种筛选方法。折射仪读数到28（如折射仪型号为10401，折射指数或比重<1.3384T.S.）与甘油水平不高于1%（90g/L）相关。折射仪测定法可作为一种检测甘油含量的参考方法。方法见生产厂家使用说明书。
F.17.4 由于不同方法的准确性和精密度存在差异，可根据要求选择以上相应方法或其它方法（如：GPO-PAP二步法）。若采用商品化试剂盒，操作应按试剂盒说明书进行。
F.18 中性粒细胞计数
检测方法见《国内临床检验操作规程》（第3版）“白细胞计数”。使用血细胞计数仪测定的应参照厂家使用说明。
F.19 亚甲蓝残留量
F.19.1 测试样品准备
取3 mL Waters Oasis小柱，置于真空萃取装置上，用6mL甲醇活化，加入6mL供试血浆，萃取亚甲蓝；用30％甲醇6mL清洗，随后用含1％乙酸的甲醇溶液2mL洗脱，洗脱液离心（3500rpm/10min），取上清液作为样品溶液。
F.19.2 标准品的制备
取亚甲蓝粉末约38mg，精密称定，置100mL量瓶中，用水溶解并稀释至刻度。精密量取50μl置50mL容量瓶中，用血浆稀释至刻度，配成*终浓度为约1.0μmol/L的亚甲蓝对照血浆。检测过滤前后样品溶液时，必须用同样的方法萃取检测标准品。
F.19.3 测定
用含1％乙酸的甲醇溶液作试剂空白，在654nm±2nm波长处测定吸光度。按以下公式计算亚甲蓝在血浆中的残留量：
血浆中亚甲蓝浓度（μmol/L）
＝
F.19.4 注意事项
病毒灭活冰冻血浆在留取标本前应置30～37℃融化，融化时间应小于6分钟。为使其尽快融化，应不断轻柔摇动血浆袋。不得急剧摇动血浆袋，以防止血浆中出现大量泡沫。
附录G
血袋标签确认方法
G.1 范围
本法适用于对拟采用的新的供应方所生产的标签的确认活动。
G.2 标签纸质和粘贴牢固度
G.2.1 质量标准
1）标签的底色应为白色，上面的字体建议采用实体黑色字体。
2）全血标签经离心后，血浆标签经离心、冷冻、水浴后，标签不能分离。
3）标签外观没有破损，相对平整。如出现皱褶，不能影响条码的扫描和读码。
4）粘贴在导管上的条码，经离心、冷冻后在常温条件下自然融化2小时，条码与导管之间不能出现分离。
5）对直接粘贴在冰冻血浆（制品表面不平整）袋上的标签，粘贴时制品不需擦拭，可直接粘贴，不能出现标签打滑的现象。
对冷藏后血液制品上的标签，应进行血袋与血袋之间、手指与标签之间进行摩擦，摩擦后标签上的油墨不得脱落。
G.2.2 测试方法－离心试验方法
按采供血过程血袋标签粘贴的操作程序，将抽检标签粘贴于规定的部位（血袋上、标签上或留样皮管）上，在分离红细胞和血浆的离心条件下离心30分钟。离心时将粘贴有标签的血袋按离心杯的容量整齐地摆放于离心杯中。
G.2.3 测试方法（冷冻试验方法）
将血液和制品需冷冻的抽检标签粘贴于规定的部位（血袋上、标签上或留样导管）上，放置－18℃低温冰箱冷冻24小时。
G.2.4 测试方法－水浴试验方法
对需经水浴的血液制品标签应进行水浴试验。取出粘贴有标签的冷冻血袋，放入于37℃温水池中水浴60分钟（低温沉淀物制品在2～6℃水浴4小时，再放入37℃温水池中水浴60分钟）后取出。
G.2.5 测试方法－粘贴牢固度试验方法
对直接粘贴在冰冻血浆袋上的标签，应将标签直接粘贴在冰冻好的血袋上。
G.2.6 测试方法－冷藏的试验方法
对需冷藏的血液制品标签放入2-6℃的冷藏冰箱，24小时后取出。
G.2.7 注意事项
标签粘贴牢固度试验在操作时应将标签平整地粘贴在血袋上。采供血过程中未规定的标签粘贴过程不应作为标签粘贴牢固度试验的过程。
G.3 条码扫描和读码
G.3.1 质量标准
各类条码在常温、冷藏、冷冻、水浴后均能为条形码识读器所读码。
G.3.2 测定方法
各类条码在常温、冷藏、冷冻、水浴后用条形码识读器读取。
G.4 印章和书写字迹清晰度
G.4.1 质量标准
标签在加盖印章和油性笔书写后，印章油印及书写字迹待干后不发生严重模糊，或部分发生模糊但仍能够清楚地辩读。
G.4.2 测定方法
将标签加盖印章和使用指定的油性笔书写，观察其清晰程度。
G.5 标签**性能检测报告：标签厂家应提供标签材质**性能检测报告，以证明其不影响血液质量。
附录H
（资料性附录）
血站使用的强制检定工作计量器目录
H.1 本目录内项目，凡用于贸易结算、**防护、医疗卫生、环境监测的，均实行强制检定。
H.2 本目录所列的计量器具是根据血站实际工作情况，从《中华人民共和国强制检定的工作计量器具目录》节录而成，并对序号进行了重新编排。包括：
1）玻璃液体温度计：玻璃液体温度计；
2）体温计：体温计；
3）砖码：砝码；
4）天平：天平；
5）秤：电子秤；
6）酒精计：酒精计；
7）密度计：密度计；
8）血压计：血压计、血压表；
9）照射量计（含医用辐射源）：照射量计、医用辐射源；
10）电离辐射防护仪：射线监测仪、照射量率仪、放射性表面污染仪、个人剂量计；
11）声级计：声级计；
12）酸度计：酸度计、血气酸碱平衡分析仪；
13）火焰光度计：火焰光度计；
14）分光光度计：可见光分光光度计、紫外分光光度计、红外分光光度计、荧光分光光度计、原子吸收分光光度计；
15）比色计：滤光光电比色计、荧光光电比色计；
16）血球计数器：电子血球计数器。